يعرض 1 - 10 نتائج من 500 نتيجة بحث عن '"A. A. Bobrysheva"', وقت الاستعلام: 0.94s تنقيح النتائج
  1. 1
    دورية أكاديمية
  2. 2
    دورية أكاديمية

    المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2024); 154-161 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2024); 154-161 ; 2658-719X ; 0370-1069

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1956/1461Test; Пономаренко Д.Г., Скударева О.Н., Хачатурова А.А., Лукашевич Д.Е., Жаринова И.В., Даурова А.В., Германова А.Н., Логвиненко О.В., Ракитина Е.Л., Костюченко М.В., Манин Е.А., Малецкая О.В., Куличенко А.Н. Бруцеллез: тенденции развития ситуации в мире и прогноз на 2022 г. в Российской Федерации. Проблемы особо опасных инфекций. 2022; 2:36–45. DOI:10.21055/0370-1069-2022-2-36-45.; Ющук Н.Д., Венгеров Ю.Я., редакторы. Инфекционные болезни: национальное руководство. 3-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2021. 1104 с. DOI:10.33029/9704-6122-8-INB2021-1-1104.; Al Dahouk S., Tomaso H., Prenger-Berninghoff E., Splettstoesser W.D., Scholz H.C., Neubauer H. Identification of Bruicella species and biotypes using polymerase chain reactionrestriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP). Crit. Rev. Microbiol. 2005; 31(4):191–6. DOI:10.1080/10408410500304041.; Kumari G., Doimari S., Suman Kumar M., Singh M., Singh D.K. MLVA typing of Brucella melitensis and B. abortus isolates of animal and human origin from India. Anim. Biotechnol. 2023; 34(2):375–83. DOI:10.1080/10495398.2021.1971685.; Sayour A.E., Elbauomy E., Abdel-Hamid N.H., Mahrous A., Carychao D., Cooley M.B., Elhadidy M. MLVA fingerprinting of Brucella melitensis circulating among livestock and cases of sporadic human illness in Egypt. Transbound. Emerg. Dis. 2020; 67(6):2435– 45. DOI:10.1111/tbed.13581.; Zhao Z.J., Li J.Q., Ma L., Xue H.M., Yang X.X., Zhao Y.B., Qin Y.M., Yang X.W., Piao D.R., Zhao H.Y., Tian G.Z., Li Q., Wang J.L., Tian G., Jiang H., Xu L.Q. Molecular characteristics of Brucella melitensis isolates from humans in Qinghai Province, China. Infect. Dis. Poverty. 2021; 10(1):42. DOI:10.1186/s40249-021-00829-0.; Piao D.R., Liu X., Di D.D., Xiao P., Zhao Z.Z., Xu L.Q., Tian G.Z., Zhao H.Y., Fan W.X., Cui B.Y., Jiang H. Genetic polymorphisms identify in species/biovars of Brucella isolated in China between 1953 and 2013 by MLST. BMC Microbiol. 2018; 18(1):7. DOI:10.1186/s12866-018-1149-0.; Shome R., Krithiga N., Shankaranarayana P.B., Jegadesan S., Udayakumar S.V., Shome B.R., Saikia G.K., Sharma N.K., Chauhan H., Chandel B.S., Jeyaprakash R., Rahman H. Genotyping of Indian antigenic, vaccine, and field Brucella spp. using multilocus sequence typing. J. Infect. Dev. Ctries. 2016; 10(3):237–44. DOI:10.3855/jidc.6617.; Whatmore A.M., Koylass M.S., Muchowski J., EdwardsSmallbone J., Gopaul K.K., Perret L.L. Extended multilocus sequence analysis to describe the global population structure of the genus Brucella: phylogeography and relationship to biovars. Front. Microbiol. 2016; 7:2049. DOI:10.3389/fmicb.2016.02049.; Ковалев Д.А., Кузнецова И.В., Жиров А.М., Сердюк Н.С., Жилченко Е.Б., Пономаренко Д.Г., Водопьянов А.С., Водопьянов С.О., Куличенко А.Н. Генетическое типирование штаммов Brucella melitensis на основе анализа вариабельности INDEL-локусов. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2022; 12(1):81–6. DOI:10.18565/epidem.2022.12.1.81-6.; Moran-Gilad J. Whole genome sequencing (WGS) for food-borne pathogen surveillance and control-taking the pulse. Euro Surveill. 2017; 22(23):30547. DOI:10.2807/1560-7917.ES.2017.22.23.30547.; Besser J., Carleton H.A., Gerner-Smidt P., Lindsey R.L., Trees E. Next-generation sequencing technologies and their application to the study and control of bacterial infections. Clin. Microbiol. Infect. 2018; 24(4):335–41. DOI:10.1016/j.cmi.2017.10.013.; Collineau L., Boerlin P., Carson C.A., Chapman B., Fazil A., Hetman B., McEwen S.A., Parmley E.J., Reid-Smith R.J., Taboada E.N., Smith B.A. Integrating whole-genome sequencing data into quantitative risk assessment of foodborne antimicrobial resistance: a review of opportunities and challenges. Front. Microbiol. 2019; 10:1107. DOI:10.3389/fmicb.2019.01107.; Carriço J.A., Sabat A.J., Friedrich A.W., Ramirez M. Bioinformatics in bacterial molecular epidemiology and public health: databases, tools and the next-generation sequencing revolution. Euro Surveill. 2013; 18(4):20382. DOI:10.2807/ese.18.04.20382-en.; Janowicz A., De Massis F., Ancora M., Cammà C., Patavino C., Battisti A., Prior K., Harmsen D., Scholz H., Zilli K., Sacchini L., Di Giannatale E., Garofolo G. Core genome multilocus sequence typing and single nucleotide polymorphism analysis in the epidemiology of Brucella melitensis infections. J. Clin. Microbiol. 2018; 56(9):e00517-18. DOI:10.1128/JCM.00517-18.; Abdel-Glil M.Y., Thomas P., Brandt C., Melzer F., Subbaiyan A., Chaudhuri P., Harmsen D., Jolley K.A., Janowicz A., Garofolo G., Neubauer H., Pletz M.W. Core genome multilocus sequence typing scheme for improved characterization and epidemiological surveillance of pathogenic Brucella. J. Clin. Microbiol. 2022; 60(8):e0031122. DOI:10.1128/jcm.00311-22.; Tan K.K., Tan Y.C., Chang L.Y., Lee K.W., Nore S.S., Yee W.Y., Mat Isa M.N., Jafar F.L., Hoh C.C., AbuBakar S. Full genome SNP-based phylogenetic analysis reveals the origin and global spread of Brucella melitensis. BMC Genomics. 2015; 16(1):93. DOI:10.1186/s12864-015-1294-x.; Pisarenko S.V., Kovalev D.A., Volynkina A.S., Ponomarenko D.G., Rusanova D.V., Zharinova N.V., Khachaturova A.A., Tokareva L.E., Khvoynova I.G., Kulichenko A.N. Global evolution and phylogeography of Brucella melitensis strains. BMC Genomics. 2018; 19(1):353. DOI:10.1186/s12864-018-4762-2.; FastQC: A quality control tool for high throughput sequence data. 2010. [Электронный ресурс]. URL: http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqcTest/ (дата обращения 20.07.2023).; Bolger A.M., Lohse M., Usadel B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. BioInformatics. 2014; 30(15):2114–20. DOI:10.1093/bioinformatics/btu170.; Gurevich A., Saveliev V., Vyahhi N., Tesler G. QUAST: quality assessment tool for genome assemblies. Bioinformatics. 2013; 29(8):1072–5. DOI:10.1093/bioinformatics/btt086.; Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol. Biol. Evol. 2018; 35(6):1547–9. DOI:10.1093/molbev/msy096.; Letunic I., Bork P. Interactive Tree Of Life (iTOL): an online tool for phylogenetic tree display and annotation. Bioinformatics. 2007; 23(1):127–8. DOI:10.1093/bioinformatics/btl529.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1956Test

  3. 3
    دورية أكاديمية
  4. 4
    مؤتمر
  5. 5
    دورية أكاديمية

    المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2023); 61-74 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2023); 61-74 ; 2658-719X ; 0370-1069

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1821/1381Test; Попова А.Ю., Куличенко А.Н., редакторы. 70 лет Ставропольскому научно-исследовательскому противочумному институту. Ставрополь: ООО «Дизайн-студия Б»; 2022. 232 с. [Электронный ресурс]. URL: https://snipchi.ru/updoc/book_stavnipchi_70years.pdfTest.; Онищенко Г.Г., Куличенко А.Н., редакторы. Бруцеллез. Современное состояние проблемы. Ставрополь: ООО «Губерния»; 2019. 336 c.; Пономаренко Д.Г., Скударева О.Н., Хачатурова А.А., Лукашевич Д.Е., Жаринова И.В., Даурова А.В., Германова А.Н., Логвиненко О.В., Ракитина Е.Л., Костюченко М.В., Манин Е.А., Малецкая О.В., Куличенко А.Н. Бруцеллез: тенденции развития ситуации в мире и прогноз на 2022 г. в Российской Федерации. Проблемы особо опасных инфекций. 2022; 2:36–45. DOI:10.21055/0370-1069-2022-2-36-45.; Le Flèche P., Jacques I., Grayon M., Al Dahouk S., Bouchon P., Denoeud F., Nöckler K., Neubauer H., Guilloteau L.A., Vergnaud G. Evaluation and selection of tandem repeat loci for a Brucella MLVA typing assay. BMC Microbiol. 2006; 6:9. DOI:10.1186/1471-2180-6-9.; Ma J.Y., Wang H., Zhang X.F., Xu L.Q., Hu G.Y., Jiang H., Zhao F., Zhao H.Y., Piao D.R., Qin Y.M., Cui B.Y., Lin G.H. MLVA and MLST typing of Brucella from Qinghai, China. Infect. Dis. Poverty. 2016; 5:26. DOI:10.1186/s40249-016-0123-z.; MLVA bank for Microbes Genotyping. [Электронный ресурс]. URL: http://microbesgenotyping.i2bc.paris-saclay.fr/databasesTest.; R Core Team (2020). R: A Language and Environment for Statistical Computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. [Электронный ресурс]. URL: https://www.r-project.orgTest/.; Wickham H., Averick M., Bryan J., Chang W., D’Agostino McGowan L., François R., Grolemund G., Hayes A., Henry L., Hester J., Kuhn M., Pedersen T.L., Miller E., Bache S.M., Müller K., Ooms J., Robinson D., Seidel D.P., Spinu V., Takahashi K., Vaughan D., Wilke C., Woo K., Yutani H. Welcome to the tidyverse. JOSS. 2019; 4(43):1686. DOI:10.21105/JOSS.01686.; Эпизоотическая ситуация в Российской Федерации 2022 (III квартал). [Электронный ресурс]. URL: https://fsvps.gov.ru/sites/default/files/files/iac/iac_3_kv.2022_goda.pdfTest.; Vergnaud G., Hauck Y., Christiany D., Daoud B., Pourcel C., Jacques I., Cloeckaert A., Zygmunt M.S. Genotypic expansion within the population structure of classical Brucella species revealed by MLVA16 typing of 1404 Brucella isolates from different animal and geographic origins, 1974–2006. Front. Microbiol. 2018; 9:1545. DOI:10.3389/fmicb.2018.01545.; Wattam A.R., Foster J.T., Mane S.P., Beckstrom-Sternberg S.M., Beckstrom-Sternberg J.M., Dickerman A.W., Keim P., Pearson T., Shukla M., Ward D.V., Williams K.P., Sobral B.W., Tsolis R.M., Whatmore A.M., O’Callaghan D. Comparative phylogenomics and evolution of the Brucellae reveal a path to virulence. J. Bacteriol. 2014; 196(5):920–30. DOI:10.1128/JB.01091-13.; Whatmore A.M., Koylass M.S., Muchowski J., Edwards- Smallbone J., Gopaul K.K., Perrett L.L. Extended multilocus sequence analysis to describe the global population structure of the genus Brucella: Phylogeography and relationship to biovars. Front. Microbiol. 2016; 7:2049. DOI:10.3389/fmicb.2016.02049.; Хачатурова А.А., Пономаренко Д.Г., Ковалев Д.А., Германова А.Н., Лукашевич Д.Е., Русанова Д.В., Сердюк Н.С., Семенко О.В., Жиров А.М., Катунина Л.С., Куличенко А.Н. Анализ заболеваемости людей бруцеллезом и молекулярнобиологическая характеристика изолятов Brucella melitensis на длительно неблагополучных по бруцеллезу территориях юга европейской части России. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022; 99(1):63–74. DOI:10.36233/0372-9311-185.; Pisarenko S.V., Kovalev D.A., Volynkina A.S., Ponomarenko D.G., Rusanova D.V., Zharinova N.V., Khachaturova A.A., Tokareva L.E., Khvoynova I.G., Kulichenko A.N. Global evolution and phylogeography of Brucella melitensis strains. BMC Genomics. 2018; 19(1):353. DOI:10.1186/s12864-018-4762-2.; Tan K.K., Tan Y.C., Chang L.Y., Lee K.W., Nore S.S., Yee W.Y., Mat Isa M.N., Jafar F.L., Hoh C.C., AbuBakar S. Full genome SNP-based phylogenetic analysis reveals the origin and global spread of Brucella melitensis. BMC Genomics. 2015; 16(1):93. DOI:10.1186/s12864-015-1294-x.; Kovalev D.A., Ponomarenko D.G., Pisarenko S.V., Shapakov N.A., Khachaturova A.A., Serdyuk N.S., Bobrysheva O.V., Kulichenkо A.N. Phylogeny of Brucella abortus strains isolated in the Russian Federation. Asian Pac. J. Trop. Med. 2021; 14(7):323–9. DOI:10.4103/1995-7645.320523.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1821Test

  6. 6
    دورية أكاديمية

    المصدر: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2023); 147-155 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2023); 147-155 ; 2658-719X ; 0370-1069

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1867/1418Test; Shadomy S., El Idrissi A., Raizman E., Bruni M., Palamara E., Pittiglio C., Lubroth J. Anthrax outbreaks: a warning for improved prevention, control and heightened awareness. Empres Watch. 2016; Vol. 37. [Электронный ресурс]. URL: http://www.fao.org/3/ai6124e.pdfTest (дата обращения 09.11.2020).; Попова А.Ю., Демина Ю.В., Ежлова Е.Б., Куличенко А.Н., Рязанова А.Г., Малеев В.В., Плоскирева А.А., Дятлов И.А., Тимофеев В.С., Нечепуренко Л.А., Харьков В.В. Вспышка сибирской язвы в Ямало-Ненецком автономном округе в 2016 году, эпидемиологические особенности. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 4:42–6. DOI:10.21055/0370-1069-2016-4-42-46.; Еременко Е.И., Рязанова А.Г., Писаренко С.В., Аксенова Л.Ю., Семенова О.В., Котенева Е.А., Цыганкова О.И., Ковалев Д.А., Головинская Т.М., Чмеренко Д.К., Куличенко А .Н. Сравнительный анализ методов генетического типирования Bacillus anthracis. Генетика. 2019; 55(1):40–51. DOI:10.1134/S0016675819010065.; Thierry S., Tourterel C., Le Flèche P., Derzelle S., Dekhil N., Mendy C., Colaneri C., Vergnaud G., Madani N. Genotyping of French Bacillus anthracis strains based on 31-loci multi locus VNTR analysis: epidemiology, marker evaluation, and update of the internet genotype database. PLoS One. 2014; 9(6):e95131. DOI:10.1371/journal.pone.0095131.; Lasch P., Jacob D., Grunow R., Schwecke T., Doellinger J. Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight (MALDITOF) mass spectrometry (MS) for the identification of highly pathogenic bacteria. TrAC – Trends Anal. Chem. 2016; 85(Pt. 1):103–11. DOI:10.1016/j.trac.2016.04.013.; Teramoto K., Okubo T., Yamada Y., Sekiya S., Iwamoto S., Tanaka K. Classification of Cutibacterium acnes at phylotype level by MALDI-MS proteotyping. Proc. Jpn Acad., Ser. B. Phys. Biol. Sci. 2019; 95(10):612–23. DOI:10.2183/pjab.95.042.; Афанасьев М.В., Кравец Е.В., Такайшвили В.Е., Дугаржапова З.Ф., Балахонов С.В. Молекулярно-генетическая характеристика штаммов Bacillus anthracis, циркулирующих на территории Сибири и Дальнего Востока. В кн.: Актуальные проблемы эпидемиологии и профилактической медицины: Материалы VI Всерос. науч.-практ. конф. молодых ученых и специалистов Роспотребнадзора (22–24 октября 2014 г., Ставрополь). Ставрополь: Экспо-Медиа; 2014. С. 53–4.; Wei J., Zhang H., Zhang H., Zhang E., Zhang B., Zhao F., Xiao D. Novel strategy for rapidly and safely distinguishing Bacillus anthracis and Bacillus cereus by use of peptide mass fingerprints based on matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry. J. Clin. Microbiol. 2020; 59(1):e02358-20. DOI:10.1128/JCM.02358-20.; Takahashi N., Nagai S., Fujita A., Ido Y., Kato K., Saito A., Moriya Y., Tomimatsu Y., Kaneta N., Tsujimoto Y., Tamura H. Discrimination of psychrotolerant Bacillus cereus group based on MALDI-TOF MS analysis of ribosomal subunit proteins. Food Microbiol. 2020; 91:103542. DOI:10.1016/j.fm.2020.103542.; Gibb S., Strimmer K. Mass spectrometry analysis using MALDIquant. In: Datta S., Mertens B., editors. Statistical Analysis of Proteomics, Metabolomics, and Lipidomics Data Using Mass Spectrometry. Springer International Publishing; 2017. P. 101–24. DOI:10.1007/978-3-319-45809-0_6.; Ульшина Д.В., Еременко Е.И., Ковалев Д.А., Рязанова А.Г., Кузнецова И.В., Аксенова Л.Ю., Семенова О.В., Бобрышева О.В., Сирица Ю.В., Куличенко А.Н. Выявление особенностей масс-спектров белковых экстрактов споровой и вегетативной форм возбудителя сибирской язвы методом времяпролетной масс-спектрометрии. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018; 6:66–72. DOI:10.36233/0372-9311-2018-6-66-72.; Van Ert M.N., Easterday W.R., Huynh L.Y., Okinaka R.T., Hugh-Jones M.E., Ravel J., Zanecki S.R., Pearson T., Simonson T.S., U’Ren J.M., Kachur S.M., Leadem-Dougherty R.R., Rhoton S.D., Zinser G., Farlow J., Coker P.R., Smith K.L., Wang B., Kenefic L.J., Fraser-Liggett C.M., Wagner D.M., Keim P. Global genetic population structure of Bacillus anthracis. PLoS One. 2007; 2(5):e461. DOI:10.1371/journal.pone.0000461.; Hunter P.R., Gaston M.A. Numerical index of the discriminatory ability of typing systems: an application of Simpson’s index of diversity. J. Clin. Microbiol. 1988; 26(11):2465–6. DOI:10.1128/jcm.26.11.2465-2466.1988.; Dybwad M., van der Laaken A.L., Blatny J.M., Paauw A. Rapid identification of Bacillus anthracis spores in suspicious powder samples by using matrix-assisted laser desorption ionizationtime of flight mass spectrometry (MALDI-TOF MS). Appl. Environ. Microbiol. 2013; 79(17):5372–83. DOI:10.1128/AEM.01724-13.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1867Test

  7. 7
    دورية أكاديمية

    المصدر: Strategic guidelines for the development of science and education; 35-36 ; Стратегические ориентиры развития науки и образования; 35-36

    وصف الملف: text/html

    العلاقة: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-6050720-9-6; https://interactive-plus.ru/e-articles/892/Action892-561112.pdfTest; Липатова А.С. Организация подвижных игр на переменах (в методическую копилку учителя начальных классов) / А.С. Липатова [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://nsportal.ru/shkola/fizkultura-i-sport/library/2020/12/19/organizatsiya-podvizhnyh-igr-na-peremenah-vTest (дата обращения: 20.11.2023).; https://interactive-plus.ru/files/Books/892/Cover-892.jpg?req=561112Test; https://interactive-plus.ru/article/561112/discussion_platformTest

  8. 8
    دورية أكاديمية
  9. 9
    دورية أكاديمية

    المصدر: Issues of Science and Education: New Approaches and Current Studies; 121-122 ; Вопросы науки и образования: новые подходы и актуальные исследования; 121-122

    وصف الملف: text/html

    العلاقة: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-6049492-8-3; https://interactive-plus.ru/e-articles/862/Action862-559762.pdfTest; Алиев Т.И. Основы моделирования дискретных систем / Т.И. Алиев –СПб: ГУ ИТМО, 2009.; Боев В.Д. Имитационное моделирование систем: учебное пособие для вузов / В.Д. Боев. – М.: Юрайт, 2020. – 253 с.; Троценко В.В. Системы управления технологическими процессами и информационные: учебное пособие для СПО / В.В. Троценко, В.К. Федоров, А.И. Забудский [и др.]. – 2-е изд., испр. и доп. – М.: Юрайт, 2020 – 146 с.; https://interactive-plus.ru/files/Books/862/Cover-862.jpg?req=559762Test; https://interactive-plus.ru/article/559762/discussion_platformTest

  10. 10
    دورية أكاديمية