يعرض 1 - 10 نتائج من 38 نتيجة بحث عن '"прогностический фактор"', وقت الاستعلام: 1.16s تنقيح النتائج
  1. 1
    دورية أكاديمية
  2. 2
    دورية أكاديمية

    المصدر: Russian Journal of Pediatric Hematology and Oncology; Том 7, № 3 (2020); 39-46 ; Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО); Том 7, № 3 (2020); 39-46 ; 2413-5496 ; 2311-1267 ; 10.21682/2311-1267-2020-7-3

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://journal.nodgo.org/jour/article/view/623/569Test; Самбурова Н.В., Пименов И.А., Жевак Т.Н., Литвицкий П.Ф. Саркома Юинга: молекулярно-генетические механизмы патогенеза. Вопросы современной педиатрии 2019;18(4):257–63. doi:10.15690/vsp.v18i4.2042.; Семенова А.И. Саркома Юинга: характеристика заболевания, особенности диагностики, лечебная тактика. Практическая онкология 2010;11(1):45.; Буланов Д.В. Злокачественные мелкокруглоклеточные опухоли семейства саркомы Юинга: Современные представления о гистогенезе, иммуногистохимических и молекулярно-генетических маркерах. Молекулярная медицина 2013;1:12–4.; Chaturvedi A., Hoffman L.M., Jensen C.C., Lin Y.C., Grossmann A.H., Randall R.L., Lessnick S.L., Welm A.L., Beckerle M.C. Molecular dissection of the mechanism by which EWS/FLI expression compromises actin cytoskeletal integrity and cell adhesion in Ewing sarcoma. Mol Biol Cell 2014;25(18):2695–709. doi:10.1091/mbc.E14-01-0007.; Хмелевская В.Н., Куприянова Е.И., Цепенко В.В. Саркома Юинга костей таза (литературная справка). Клинический случай длительного наблюдения больной после излечения саркомы Юинга костей таза с метастазами в регионарные лимфатические узлы и в правое легкое. Cаркомы костей, мягких тканей и опухоли кожи 2019;1:34–5.; Васильев Н.В., Полетаева С.В., Табакаев С.А., Тюкалов Ю.И., Перельмутер В.М. Саркома Юинга: особенности лимфогенного метастазирования и факторы прогноза. Сибирский онкологический журнал 2019; 18(5): 29–37. doi:10.21294/1814-4861-2019-185-29-37.; Васильев Н.В. Лимфогенное метастазирование сарком мягких тканей: частота метастазирования, факторы риска, механизмы возникновения. Сибирский онкологический журнал 2015;3:68–75.; Lawlor E.R., Sorensen P.H. Twenty years on: what do we really know about Ewing sarcoma and what is the path forward? Crit Rev Oncol 2015;20(3‒4):155‒71. doi:10.1615/critrevoncog.2015013553.; Фармаковская М.Д., Хромова Н.В., Рыбко В.А., Копнин П.Б. Роль эпителиально-мезенхимального перехода в регуляции свойств раковых стволовых клеток сóлидных опухолей. Российский биотерапевтический журнал 2015;4;14.; Hill B.S., Pelagalli A., Passaro N., Zannetti A. Tumor-educated mesenchymal stem cells promote pro-metastatic phenotype. Oncotarget 2017;8(42):73296‒311. doi:10.18632/oncotarget.20265.; Jolly M.K., Ware K.E., Gilja S., Somarelli J.A., Levine H. EMT and MET: necessary or permissive for metastasis? Mol Oncol 2017;11(7):755‒69. doi:10.1002/1878-0261.12083.; Chaffer C.L., Thompson E.W., Williams E.D. Mesenchymal to epithelial transition in development and disease. Cells Tissues Organs 2007;185(1‒3):7‒19. doi:10.1159/000101298.; Юрченко Д.Ю., Бурцев Д.В., Кузнецов С.А., Сагакянц А.Б., Мкртчян Г.А., Старжецкая М.В., Беспалова А.И., Поповян О.П., Куштова Л.Б. Некоторые особенности молекулярно-генетического патогенеза саркомы Юинга. Современные проблемы науки и образования 2019;3. [Электронный ресурс]: http://www.scienceeducation.ru/ru/article/view?id=28924Test.; Ming H., Chuang Q., Jiashi W., Bin L., Guangbin W., Xianglu J. Naringin targets Zeb1 to suppress osteosarcoma cell proliferation and metastasis. Aging (Albany NY) 2018;10(12):4141‒51. doi:10.18632/aging.101710.; Поздняков Д.Ю., Шувалов О.Ю., Барлев Н.А., Миттенберг А.Г. Транскрипционный фактор ZEB1 и его роль в процессах метастазирования и онкогенеза. Цитология 2019;61(11):915–25.; Wiles E.T., Bell R., Thomas D., Beckerle M., Lessnick S.L. ZEB2 represses the epithelial phenotype and facilitates metastasis in Ewing sarcoma. Genes Cancer 2013;4(11‒2):486‒500. doi:10.1177/1947601913506115.; Liu Y., Sánchez-Tilló E., Lu X., Huang L., Clem B., Telang S., Jenson A.B., Cuatrecasas M., Chesney J., Postigo A., Dean D.C. Sequential inductions of the ZEB1 transcription factor caused by mutation of Rb and then Ras proteins are required for tumor initiation and progression. J Biol Chem 2013;288(16):11572‒80. doi:10.1074/jbc.M112.434951.; Manshouri R., Coyaud E., Kundu S.T., Peng D.H., Stratton S.A., Alton K., Bajaj R., Fradette J.J., Minelli R., Peoples M.D., Carugo A., Chen F., Bristow C., Kovacs J.J., Barton M.C., Heffernan T., Creighton C.J., Raught B., Gibbons D.L. ZEB1/NuRD complex suppresses TBC1D2b to stimulate E-cadherin internalization and promote metastasis in lung cancer. Nat Commun 2019;10(1):5125. doi:10.1038/s41467-019-12832-z.; Wang H., Huang B., Li B.M., Cao K.Y., Mo C.Q., Jiang S.J., Pan J.C., Wang Z.R., Lin H.Y., Wang D.H., Qiu S.P. ZEB1-mediated vasculogenic mimicry formation associates with epithelialmesenchymal transition and cancer stem cell phenotypes in prostate cancer. J Cell Mol Med 2018;22(8):3768‒81. doi:10.1111/jcmm.13637.; Lindner P., Paul S., Eckstein M., Hampel C., Muenzner J.K., Erlenbach-Wuensch K., Ahmed H.P., Mahadevan V., Brabletz T., Hartmann A., Vera J., Schneider-Stock R. EMT transcription factor ZEB1 alters the epigenetic landscape of colorectal cancer cells. Cell Death Dis 2020;11(2):147. doi:10.1038/s41419-020-2340-4.; Larsen J.E., Nathan V., Osborne J.K., Farrow R.K., Deb D., Sullivan J.P., Dospoy P.D., Augustyn A., Hight S.K., Sato M., Girard L., Behrens C., Wistuba I.I., Gazdar A.F., Hayward N.K., Minna J.D. ZEB1 drives epithelial to mesenchymal transition in lung cancer. J Clin Invest 2016;126(9):3219‒35. doi:10.1172/JCI76725.; Xiao Y.Y., Lin L., Li Y.H., Jiang H.P., Zhu L.T., Deng Y.R., Lin D., Chen W., Zeng C.Y., Wang L.J., Chen S.C., Jiang Q.P., Liu C.H., Fang W.Y., Guo S.Q. ZEB1 promotes invasion and metastasis of endometrial cancer by interacting with HDGF and inducing its transcription. Am J Cancer Res 2019;9(11):2314‒30. PMID: 31815037.; https://journal.nodgo.org/jour/article/view/623Test

  3. 3
    دورية أكاديمية

    المصدر: Diagnostic radiology and radiotherapy; № 4 (2018); 5-12 ; Лучевая диагностика и терапия; № 4 (2018); 5-12 ; 2079-5343 ; 10.22328/2079-5343-2018-4

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/336/293Test; Del Brutto O.H., Mera R.M., Gladstone D., Sarmiento-Bobadilla M., Cagino K., Zambrano M., Costa A.F., Sedler M.J. Inverse relationship between the evans index and cognitive performance in nondisabled, stroke-free, community-dwelling older adults. A population-based study // Clin. Neurol. Neurosurg. 2018. Vol. 169. P. 139–143. doi:10.1016/j.clineuro.2018.03.021.; Hakim S. Some observations on CSF pressure: hydrocephalic syndrome in adults with «normal» CSF pressure [thesis in Spanish] // Javeriana University School of Medicine. 1964. Thesis No. 957. P. 1–40.; Adams R.D., Fisher C.M., Hakim S., Ojemann R.G., Sweet W.H. Symptomatic occult hydrocephalus with «normal» cerebrospinal fluid pressure: a treatable syndrome // N. Engl. J. Med. 1965. Vol. 273. P. 117–126.; Tisell M., Höglund M., Wikkelsø C. National and regional incidence of surgery for adult hydrocephalus in Sweden // Acta Neurol Scand. 2005. Vol. 112 (2). P. 72–75.; Marmarou A., Young H.F., Aygok G.A. Estimated incidence of normal pressure hydrocephalus and shunt outcome in patients residing in assisted-living and extended-care facilities // Neurosurg Focus. 2007. Vol. 22 (4). P. 67–72.; Hiraoka K., Meguro K., Mori E. Prevalence of idiopathic normal-pressure hydrocephalus in the elderly population of a Japanese rural community // Neurol. Med. Chir. (Tokyo). 2008. Vol. 48 (5). P. 197–199.; Brean A., Eide P.K. Prevalence of probable idiopathic normal pressure hydrocephalus in a Norwegian population // Acta Neurol. Scand. 2008. Vol. 118 (1). P. 48–53. doi:10.1111/j.1600–0404.2007.00982.x.; Lemcke J., Stengel D., Stockhammer F., Güthoff C., Rohde V., Meier U. Nationwide Incidence of Normal Pressure Hydrocephalus (NPH) Assessed by Insurance Claim Data in Germany // Open. Neurol. J. 2016. Vol. 10. P. 15–24. doi:10.2174/1874205X01610010015.; Jaraj D., Rabiei K., Marlow T., Jensen C., Skoog I., Wikkelsø C. Prevalence of idiopathic normal-pressure hydrocephalus // Neurology. 2014. Vol. 82 (16). P. 1449–1454. doi:10.1212/WNL.0000000000000342.; Kameda M., Yamada S., Atsuchi M., Kimura T., Kazui H., Miyajima M., Mori E., Ishikawa M., Date I., SINPHONI and SINPHONI-2 Investigators. Cost-effectiveness analysis of shunt surgery for idiopathic normal pressure hydrocephalus based on the SINPHONI and SINPHONI-2 trials // Acta Neurochir (Wien). 2017. Vol. 159 (6). P. 995–1003. doi:10.1007/s00701-017-3115-2.; Mori E., Ishikawa M., Kato T., Kazui H., Miyake H., Miyajima M., Nakajima M., Hashimoto M., Kuriyama N., Tokuda T., Ishii K., Kaijima M., Hirata Y., Saito M., Arai H.; Japanese Society of Normal Pressure Hydrocephalus. Guidelines for management of idiopathic normal pressure hydrocephalus: second edition // Neurol. Med. Chir. (Tokyo). 2012. Vol. 52 (11). P. 775–809.; Klinge P., Marmarou A., Bergsneider M., Relkin N., Black P.M. Outcome of shunting in idiopathic normal-pressure hydrocephalus and the value of outcome assessment in shunted patients // Neurosurgery. 2005. Vol. 57. P. 40–52.; Evans W.A. J. An encephalographic ratio for estimating ventricular enlargement and cerebral atrophy // Arch. Neurol. Psychiatry. 1942. Vol. 47. P. 931–937.; Jaraj D., Rabiei K., Marlow T., Jensen C., Skoog I., Wikkelsø C. Estimated ventricle size using Evans index: reference values from a population-based sample // Eur. J. Neurol. 2017. Vol. 24 (3). P. 468–474. doi:10.1111/ene.13226.; Kitagaki H., Mori E., Ishii K., Yamaji S., Hirono N., Imamura T. CSF Spaces in Idiopathic Normal Pressure Hydrocephalus: Morphology and Volumetry // AJNR Am. J. Neuroradiol. 1998. Vol. 19. P. 1277–1284.; Sasaki M., Honda S., Yuasa T., Iwamura A., Shibata E., Ohba H. Narrow CSF space at high convexity and high midline areas in idiopathic normal pressure hydrocephalus detected by axial and coronal MRI // Neuroradiology. 2008. Vol. 50 (2). P. 117–122.; Narita W., Nishio Y., Baba T., Iizuka O., Ishihara T., Matsuda M., Iwasaki M., Tominaga T., Mori E. High-Convexity Tightness Predicts the Shunt Response in Idiopathic Normal Pressure Hydrocephalus // AJNR Am. J. Neuroradiol. 2016. Vol. 16. P. 152–157.; Shinoda N., Hirai O., Hori S., Mikami K., Bando T., Shimo D., Kuroyama T., Kuramoto Y., Matsumоto M., Ueno Y. Utility of MRIbased disproportionately enlarged subarachnoid space hydrocephalus scoring for predicting prognosis after surgery for idiopathic normal pressure hydrocephalus: clinical research // J. Neurosurg. 2017. Vol. 127 (6). P. 1436–1442. doi:10.3171/2016.9.JNS161080.; Benedetto N., Gambacciani C., Aquila F., Di Carlo D.T., Morganti R., Perrini P. A new quantitative method to assess disproportionately enlarged subarachnoid space (DESH) in patients with possible idiopathic normal pressure hydrocephalus: The SILVER index // Сlin. Neurol. Neurosurg. 2017. Vol. 158. P. 27–32. doi:10.1016/j.clineuro.2017.04.015.; Ishii K., Kanda T., Harada A., Miyamoto N., Kawaguchi T., Shimada K., et al. Clinical impact of the callosal angle in the diagnosis of idiopathic normal pressure hydrocephalus // Eur. Radiol. 2008. Vol. 18 (11). P. 2678–2683.; Le May M., New P.F. Radiological diagnosis of occult normal pressure hydrocephalus // Radiology. 1970. Vol. 96. P. 347–358.; Virhammar J., Laurell K., Cesarini K.G., Larsson E.M. Preoperative Prognostic Value of MRI Findings in 108 Patients with Idiopathic Normal Pressure Hydrocephalus // AJNR Am. J. Neuroradiol. 2014. Vol. 35 (12). P. 2311–2318.; Doubal F.N., MacLullich A.M., Ferguson K.J., Dennis M.S., Wardlaw J.M. Enlarged perivascular spaces on MRI are a feature of cerebral small vessel disease // Stroke. 2010. Vol. 41 (3). P. 450– 454. doi:10.1161/STROKEAHA.109.564914.; Жетишев Р.Р., Камчатнов П.Р., Михайлова Н.А., Иващенко Р.А. Асимптомные инфаркты головного мозга — факторы риска и когнитивные нарушения // Журнал неврологии и психиатрии им. С. С. Корсакова. 2014. Т. 114. С. 3–6. [Zhetishev R.R., Kamchatnov P.R., Mihajlova N.A., Ivashchenko R.A. Asimptomnye infarkty golovnogo mozga — faktory riska i kognitivnye narusheniya. Zhurnal nevrologii i psihiatrii im. S. S. Korsakova, 2014, Vol. 114, рр. 3–6 (In Russ.)].; Iliff J., Wang M., Liao Y., Plogg B.A., Peng W., Gundersen G.A., Benveniste H., Vates G.E., Deane R., Goldman S.A., Nagelhus E.A., Nedergaard M. A Paravascular Pathway Facilitates CSF Flow Through the Brain Parenchyma and the Clearance of Interstitial Solutes, Including Amyloid // Sci Transl. Med. 2012. Vol. 4 (147). P. 147. doi:10.1126/scitranslmed.3003748.; Ringstad G., Vatnehol S.A.S., Eide K. Glymphatic MRI in idiopathic normal pressure hydrocephalus // Brain. 2017. Vol. 140 (10). P. 2691–2705. doi:10.1093/brain/awx191.; Le May M., Hochberg F.H. Ventricular differences between hydrostatic hydrocephalus and hydrocephalus ex vacuo by computed tomography // Neuroradiology. 1979. Vol. 17 (4). P. 191–195.; Wikkelsö C., Andersson H., Blomstrand C., Matousek M., Svendsen P. Computed tomography of the brain in the diagnosis of and prognosis in normal pressure hydrocephalus // Neuroradiology. 1989. Vol. 31. P. 160–165.; Kockum K., Lilja-Lund O., Larsson E.M., Rosell M., Söderström L., Virhammar J., Laurell K. The idiopathic normal-pressure hydrocephalus Radscale: a radiological scale for structured evaluation // Eur. J. Neurol. 2017. Vol. 27. P. 72–79. doi:10.1111/ene.13555.; Yin L.K., Zheng J.J., Zhao L., Hao X.Z., Zhang X.X., Tian J.Q., Zheng K., Yang Y.M… Reversed aqueductal cerebrospinal fluid net flow in idiopathic normal pressure hydrocephalus // Acta Neurol. Scand. 2017. Vol. 14. P. 25–31. doi:10.1111/ane.12750.; Kamiya K., Hori M., Irie R., Miyajima M., Nakajima M., Kamagata K., Tsuruta K., Saito A., Nakazawa M., Suzuki Y., Mori H., Kunimatsu A., Arai H., Aoki S., Abe O. Diffusion imaging of reversible and irreversible microstructural changes within the corticospinal tract in idiopathic normal pressure hydrocephalus // Neuroimage Clin. 2017. Vol. 14. P. 663–671. doi:10.1016/j.nicl.2017.03.003.; Perry A., Graffeo C.S., Fattahi N., El Sheikh M.M., Cray N., Arani A., Ehman R.L., Glaser K.J., Manduca A., Meyer F.B., Huston J. Clinical Correlation of Abnormal Findings on Magnetic Resonance Elastography in Idiopathic Normal Pressure Hydrocephalus // World Neurosurg. 2017. Vol. 99. P. 695–700. doi:10.1016/j.wneu.2016.12.121.; Lundin F., Tisell A., Dahlqvist Leinhard O., Tullberg M., Wikkelsö C., Lundberg P., Leijon G. Reduced thalamic N-acetylaspartate in idiopathic normal pressure hydrocephalus: a controlled 1H-magnetic resonance spectroscopy study of frontal deep white matter and the thalamus using absolute quantification // J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 2011. Vol. 82 (7). P. 772–778. doi:10.1136/jnnp.2010.223529.; Holodny A.I., George A.E., de Leon M.J., Golomb J., Kalnin A.J., Cooper P.R. Focal dilation and paradoxical collapse of cortical fissures and sulci in patients with normal-pressure hydrocephalus // J. Neurosurg. 1998. Vol. 89 (5). P. 742–747.; Svendsen P., Duru O. Visibility of the temporal horns on computed tomography // Neuroradiology. 1981. Vol. 21(3). P. 139–144.; Virhammar J., Laurell K., Cesarini K.G., Larsson E.M. The callosal angle measured on MRI as a predictor of outcome in idiopathic normal-pressure hydrocephalu // J. Neurosurg. 2014. Vol. 120 (1). P. 178–184. doi:10.3171/2013.8.JNS13575.; https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/336Test

  4. 4
    دورية أكاديمية

    المصدر: Cancer Urology; Том 14, № 4 (2018); 53-67 ; Онкоурология; Том 14, № 4 (2018); 53-67 ; 1996-1812 ; 1726-9776 ; 10.17650/1726-9776-2018-14-4

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/889/808Test; Злокачественные новообразования в России в 2017 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, Г.В. Петровой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена - филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2018. 250 с.; Состояние онкологической помощи населению России в 2017 году. Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, Г.В. Петровой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2018. 236 с.; D’Amico A.V., Whittington R., Malkowicz S.B. et al. Predicting prostate specific antigen outcome preoperatively in the prostate specific antigen era. J Urol 2001;166(6):2185—8. PMID: 11696732.; Zumsteg Z.S., Chen Z., Howard L.E. et al. Modified risk stratification grouping using standard clinical and biopsy information for patients undergoing radical prostatectomy: results from SEARCH. Prostate 2017;77(16):1592— 600. DOI:10.1002/pros.23436. PMID: 28994485. Available at: https://doi.org/10.1002/pros.23436Test.; Park Y.H., Kim Y., Yu H. et al. Is lympho-vascular invasion a powerful predictor for biochemical recurrence in pT3 N0 prostatecancer? Results from the K-CaP database. Sci Rep 2016;6:25419. DOI:10.1038/srep25419. PMID: 27146602.; Zareba P., Flavin R., Isikbay M. et al. Perineural invasion and risk of lethal prostate cancer. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2017;26(5):719—26. DOI:10.1158/1055-9965.EPI-16-0237. PMID: 28062398.; Bravi C.A., Shariat Sh.F., Mirone V. et al. MP34-09 Prevalence and prognostic impact of prostate cancer histological variants at radical prostatectomy: a long-term, single center analysis. J Urol;199(4):e441. Available at: https://doi.org/10.1016/j.juro.2018.02.1101Test.; Robinson D., Van Allen E.M., Wu Y.M. Integrative clinical genomics of advanced prostate cancer. Cell 2015;161(5): 1215—28. DOI:10.1016/j.cell.2015.05.001. PMID: 26000489.; Ghabili K., Nguyen K., Hsiang W. et al. National trends in the management of patients with positive surgical margins at the time of radical prostatectomy. J Clin Oncol 2018;36:6_suppl:111. DOI:10.1200/JCO.2018.36.6_suppl.111.; Bandini M., Preisser F., Soligo M. et al. MP21-14 Stage-migration and survival of lymph node positive prostate cancer patients: a comprehensive trend analyses of surgically treated men over the last two decades. J Urol;199(4):e268. Available at: https://doi.org/10.1016/j.juro.2018.02.705Test.; Castro E., Goh C., Olmos D. et al. Germ-line BRCA mutations are associated with higher risk of nodal involvement, distant metastasis, and poor survival outcomes in prostate cancer. J Clin Oncol 2013;31:1748—57. DOI:10.1200/JCO.2012.43.1882. PMID:23569316. Available at: https://doi.org/10.1200/JCO.2012.43.1882Test.; Pritchard C.C., Mateo J., Walsh M.F. et al. Inherited DNA-repair gene mutations in men with metastatic prostate cancer. N Engl J Med 2016;375(5):443—53. PMID: 27433846. Available at: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1603144Test.; Gin V.N., Hegarty S.E., Hyatt C. et al. Germline genetic testing for inherited prostate cancer in practice: Implications for genetic testing, precision therapy, and cascade testing. Prostate 2018;1—7. Available at: https://doi.org/10.1002/pros.23739Test.; Pan M., Cong P„ Wang Y. et al. Novel LOVD databases for hereditary breast cancer and colorectal cancer genes in the Chinese population. Hum Mutat 2011;32(12):1335—40. DOI:10.1002/humu.21588. PMID: 21901790.; Киричек А.А., Камолов Б.Ш., Савёлов НА., Матвеев В.Б. О стадировании онкоурологических заболеваний по обновленной TNM-классификации 8-го издания. Онкоурология. 2018;14(1):166—72. DOI:10.17650/1726-9776-2018-14-1-166-172.; Hirao A., Kong Y.Y., Matsuoka S. et al. DNA damage-induced activation of p53 by the checkpoint kinase Chk2. Science 2000;287:1824—7. PMID: 10710310.; Cai Z., Chehab N.H., Pavletich N.P. Structure and activation mechanism of the CHK2 DNA damage checkpointkinase. Mol Cell 2009;35:818—29. DOI:10.1016/j.molcel.2009.09.007. PMID: 19782031.; Ahn J., Urist M., Prives C. The Chk2 protein kinase. DNA Repair (Amst) 2004;3:1039—47. DOI:10.1016/j.dnarep.2004.03.033. PMID: 15279791.; Bartek J., Lukas J. Chk1 and Chk2 kinases in checkpoint control and cancer. Cancer Cell 2003;3:421 —9. PMID: 12781359.; Stracker T.H., Usui T., Petrini J.H. Taking the time to make important decisions: the checkpoint effector kinases Chk1 and Chk2 and the DNA damage response. DNA Repair (Amst) 2009;8:1047—54. DOI:10.1016/j.dnarep.2009.04.012. PMID: 19473886.; Harper J.W., Elledge S.J. The DNA da-mage response: ten years after. Mol Cell 2007;28:739—45. DOI:10.1016/j.molcel.2007.11.015. PMID: 18082599.; Falck J., Mailand N., Syljuasen R.G. et al. The ATM-Chk2-Cdc25A checkpoint pathway guards against radioresistant DNA synthesis. Nature 2001;410:842—7. DOI:10.1038/35071124. PMID: 11298456.; Matsuoka S., Rotman G., Ogawa A. et al. Ataxia telangiectasia-mutated phosphorylates Chk2 in vivo and in vitro. Proc Natl Acad.Sci USA 2000;97:10389—94. DOI:10.1073/pnas.190030497. PMID: 10973490.; Lukas C., Falck J., Bartkova J. et al. Distinct spatiotemporal dynamics of mammalian checkpoint regulators induced by DNA damage. Nat Cell Biol 2003;5: 255—60. DOI:10.1038/ncb945. PMID: 12598907.; Antoni L., Sodha N., Collins I. et al. CHK2 kinase: cancer susceptibility and cancer therapy — two sides of the same coin? Nat Rev Cancer 2007;7:925—36. DOI:10.1038/nrc2251. PMID: 18004398.; Meijers-Heijboer H., van den Ouweland A., Klijn J. et al. Low-penetrance susceptibility to breast cancer due to CHEK2(*)1100delC in noncarriers of BRCA1 or BRCA2 mutations. Nat Genet 2002;31:55-9. DOI:10.1038/ng879. PMID: 11967536.; Vahteristo P., Bartkova J., Eerola H. et al. A CHEK2 genetic variant contributing to a substantial fraction of familial breast cancer. Am J Hum Genet 2002;71:432-8. DOI:10.1086/341943. PMID: 12094328.; Aktas D., Arno M.J., Rassool F. et al. Analysis of CHK2 in patients with myelodysplastic syndromes. Leuk Res 2002;26:985-7. PMID: 12363465.; Dong X., Wang L., Taniguchi K. et al. Mutations in CHEK2 associated with prostate cancer risk. Am J Hum Genet 2003;72:270— 80. DOI:10.1086/346094. PMID: 12533788.; Kleibl Z., Havranek O., Hlavata I. et al. The CHEK2 gene I157T mutation and other alterations in its proximity increase the risk of sporadic colorectal cancer in the Czech population. Eur J Cancer 2009;45(4):618—24. DOI:10.1016/j.ejca.2008.09.022. PMID: 18996005.; Matsuoka S., Nakagawa T., Masuda A. et al. Reduced expression and impaired kinase activity of a Chk2 mutant identified in human lung cancer. Cancer Res 2001;61:5362-5. PMID: 11454675.; Miller C.W., Ikezoe T., Krug U. et al. Mutations of the CHK2 gene are found in some osteosarcomas, but are rare in breast, lung, and ovarian tumors. Genes Chromosomes Cancer 2002;33:17-21. PMID: 11746983.; Наседкина Т.В., Громыко О.Е., Емельянова М.А. и др. Определение герминальных мутаций в генах BRCA1, BRCA2 и CHEK2 с использованием биочипов у больных раком молочной железы. Молекулярная биология 2014;48(2):243-50. DOI:10.7868/S0026898414020141.; Батенева Е.И., Филиппова М.Г., Тюляндина А.С. и др. Высокая частота мутаций в генах BRCA1, BRCA2, CHEK2, NBN, BLM у больных раком яичников в российской популяции. Опухоли женской репродуктивной системы 2014;(4):51 —6.; Батенева Е.И. Новая диагностическая панель для выявления наследственной предрасположенности к развитию рака молочной железы и рака яичников. Автореф. дис. . на канд. мед. наук. РОНЦ им. Н.Н. Блохина, M., 2015. C. 22.; Cybulski C., Wokolorczyk D., Kluzniak W. et al. An inherited NBN mutation is associated with poor prognosis prostate cancer. Br J Cancer 2013;108(2):461-8. DOI:10.1038/bjc.2012.486. PMID: 23149842.; Seppala E.H., Ikonen T., Mononen N. et al. CHEK2 variants associate with he-reditary prostate cancer. Br J Cancer 2003;89(10):1966—70. DOI:10.1038/sj.bjc.6601425. PMID: 14612911.; Paulo P., Maia S., Pinto C. et al. Targeted next generation sequencing identifies functionally deleterious germline mutations in novel genes in early-onset/familial prostate cancer. PLoS Genet 2018;14(4):e1007355. DOI:10.1371/journal.pgen.1007355. PMID: 29659569.; Wu Y., Yu H., Zheng S.L. et al. A comprehensive evaluation of CHEK2 germline mutations in men with prostate cancer. Prostate 2018;78(8):607—15. DOI:10.1002/pros.23505. PMID: 29520813.; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/889Test

  5. 5
    دورية أكاديمية

    المصدر: Malignant tumours; Том 9, № 1 (2019); 16-21 ; Злокачественные опухоли; Том 9, № 1 (2019); 16-21 ; 2587-6813 ; 2224-5057

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/611/419Test; Каприн А. Д., Старинский В. В., Петрова Г. В. Состояние онкологической помощи населению России в 2016 году, Москва 2017 (стр.157).; Мерабишвили В. М. Злокачественные новообразования в северо западном федеральном округе России (заболеваемость, смертность, контингенты, выживаемость больных), выпуск третий под ред. Беляева А. М, СПб,2017, стр.22 32.; Journal of Clinical Oncology,27,19, 01.07.2009.; D. Sargent ASCO 2014,#3507; Практические рекомендации по лечению злокачественных опухолей Российского общества клинической онкологии, версия 2017 (стр.261 264).; Expression pattern of CXC chemokine receptor 4 is correlated with lymph node metastasis in human invasive ductal carcinoma. Masahiro Kato, Joji Kitayama, Shinsuke Kazama, Hirokazu Nagawa; Breast Cancer Research, October,2003.; Чердынцева Н. В., Гервас П. А., Литвяков Н. В. с соавт. Хемокины и прогрессия злокачественных новообразований. Медицинская Иммунология.–2006. – Т. 8, – № 2 3. – С.355 356.; А. С. Симбирцев Цитокины: классификация и биологические функции // Цитокины и воспаление. 2004. Том 3 № 2. – С.16 22.; Strieter R. M., Polverini P. J., Kunkel S. L. et al. The functional role of the ELR motif in CXC chemokine mediated angiogenesis. J Biol Chem. 1995. 270 (45): 27348 57.; Rivera CG, Bader JS, Popel AS. Angiogenesis associated crosstalk between collagens, CXC chemokines, and thrombospondin domain containing proteins. Ann Biomed Eng. 2011; 39 (8):2213 22.; Бережная Н. М., Чехун В. Ф. Иммунология злокачественного роста – 2005; Muller A, Homey B, Soto H, et al. Involvement of chemokine receptors in breast cancer metastasis. Nature. 2001; 410:50 56.; Zeelenberg IS, Ruuls Van Stalle L, Roos E. The chemokine receptor CXCR4 is required for outgrowth of colon carcinoma micrometastases. Cancer Res. 2003 Jul 1; 63 (13):3833 9.; Sehgal, A., Keener, C., Boynton, AL., Warrick, J., and Murphy, GP. CXCR 4, a chemokine receptor, is overexpressed in and required for proliferation of glioblastoma tumor cells.1998. J. Surg. Oncol. 69, 99 104; Uchida D, Begum NM, Almofti A, Nakashiro K, Kawamata H, Tateishi Y, Hamakawa H, Yoshida H, Sato M. Possible role of stromal cellderived factor 1/CXCR4 signaling on lymph node metastasis of oral squamous cell carcinoma. Exp Cell Res 2003. 290: 289 302.; Yu X et all J Exp Clin Cancer Res. 2019 Jan 24;38 (1):32. doi:10.1186/s13046-018-1014-x. CXCL12/CXCR4 promotes inflammation driven colorectal cancer -progression through activation of RhoA signaling by sponging miR 133a 3p.; Kim J, Mori T, Chen SL, Amersi FF, Martinez SR, Kuo C, Turner RR, Ye X, Bilchik AJ, Morton DL, Hoon DS. Chemokine receptor CXCR4 expression in patients with melanoma and colorectal cancer liver metastases and the associa tion with disease outcome. Ann Surg. 2006 Jul; 244 (1):113 20.; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/611Test

  6. 6
    دورية أكاديمية

    المساهمون: RFFR, grant18-44-703004, РФФИ и администрации Томской области в рамках научного проекта № 18-44-703004 « Физический статус вируса папилломы человека и прогрессия цервикальной интраэпителиальной неоплазии»

    المصدر: Siberian journal of oncology; Том 17, № 6 (2018); 70-77 ; Сибирский онкологический журнал; Том 17, № 6 (2018); 70-77 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2018-17-6

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/905/589Test; Bosch F.X. Human papillomavirus: science and technologies for the elimination of cervical cancer. Expert Opin Pharmacother. 2011 Oct; 12 (14): 2189-204. doi:10.1517/14656566.2011.596527.; Apgar B.S., Zoschnick L., Wright T.C.Jr. The 2001 Bethesda System terminology. Am Fam Physician. 2003 Nov 15; 68 (10): 1992-8.; Bruni L., Diaz M., Castellsague M., Ferrer E., Bosch F.X., de Sanjose S. Cervical human papillomavirus prevalence in 5 continents: meta-analysis of 1 million women with normal cytological findings. J Infect Dis. 2010 Dec 15; 202 (12): 1789-99. doi:10.1086/657321.; IbragimovaM., Tsyganov M, ShpilevaO., ChuruksaevaO.,Bychkov V, Kolomiets L., Litviakov N. HPV status and its genomic integration affect survival of patients with cervical cancer. Neoplasma. 2018 Mar 14; 65 (3): 441-448. doi:10.4149/neo_2018_170414N277.; JiangM., Baseman J.G., KoutskyL.A., Feng Q.,Mao C., KiviatN.B., Xi L.F. Sequence variation of human papillomavirus type 16 and measurement of viral integration by quantitative PCR. J Clin Microbiol. 2009 Mar; 47 (3): 521-6. doi:10.1128/JCM.02115-08.; Коломиец Л.А., Чуруксаева О.Н., Шпилева О.В., Уразова Л.Н., РодичеваН.С. Особенности распространения различных типов вирусов папилломы человека (ВПЧ) у пациенток с цервикальными неоплазиями и раком шейки матки в г. Томске. Сибирский онкологический журнал. 2012; 3: 41-45.; Muhoz N., Bosch F.X., de Sanjose S., Herrero R., Castellsague X., Shah K.V., Snijders P.J., Meijer C.J.; International Agency for Research on Cancer Multicenter Cervical Cancer Study Group. Epidemiologic classification of human papillomavirus types associated with cervical cancer. New Eng J Med. 2003; 348 (6): 518-527.; Белокриницкая Т.Е., Фролова Н.И., Туранова О.В., Шемякина К.Н., ПлетневаВ.А., СамбуеваН.Б., МальцеваЕ.Е. Результативность и приемлемость обследования на вирус папилломы человека при самостоятельном и врачебном заборе вагинального отделяемого. Акушерство и гинекология. 2017; 2: 97-105. doi:10.18565/aig.2017.2.97-105.; Sasieni P., Castanon A., Cuzick J. Effectiveness of cervical screening with age: population based case-control study of prospectively recorded data. BMJ. 2009 Jul 28; 339: b2968. doi:10.1136/bmj.b2968.; Новик В.И. Скрининг рака шейки матки. Практическая онкология. 2010; 11 (2): 66-73.; Peirson L., Fitzpatrick-Lewis D., Ciliska D., Warren R. Screening for cervical cancer: a systematic review and meta-analysis. Syst Rev. 2013 May 24; 2: 35. doi:10.1186/2046-4053-2-35.; Clavel C., Masure M., Bory J.-P., Putaud I., Mangeonjean C., LorenzatoM., NazeyrollasP., GabrielR., Quereux C., BirembautP. Human papillomavirus testing in primary screening for the detection of high-grade cervical lesions: a study of 7932 women. Br J Cancer. 2001 Jun 15; 84 (12): 1616-23. doi:10.1054/bjoc.2001.1845.; StanleyM. Pathology and epidemiology of HPV infection in females. Gynecol Oncol. 2010 May; 117 (2 Suppl): S5-10. doi:10.1016/j.ygyno.2010.01.024.; Андосова Л.Д., Конторщикова К.Н., Качалина О.В. Современные представления о роли вируса папилломы человека в генезе цервикального рака (обзор). Медицинский альманах. 2011; 18 (5): 116-120.; Vink M.A., Bogaards J.A., van Kemenade F.J., de Melker H.E., Meijer C.J.L.M., Berkhof J. Clinical progression of high-grade cervical intraepithelial neoplasia: estimating the time to preclinical cervical cancer from doubly censored national registry data. Am J Epidemiol. 2013 Oct 1; 178 (7): 1161-9. doi:10.1093/aje/kwt077.; Hu Z., Zhu D., Wang W., Li W., Jia W., Zeng X., Ding W., Yu L., Wang X., Wang L., Shen H., Zhang C., Liu H., Liu X., Zhao Y., Fang X., Li S., Chen W., Tang T., Fu A., Wang Z., Chen G., Gao Q., Li S., Xi L., Wang C., Liao S., Ma X., Wu P., Li K., Wang S., Zhou J., Wang J., Xu X., Wang H., Ma D. Genome-wide profiling of HPV integration in cervical cancer identifies clustered genomic hot spots and a potential microhomology-mediated integration mechanism. Nat Genet. 2015 Feb; 47 (2): 158-63. doi:10.1038/ng.3178.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/905Test

  7. 7
    دورية أكاديمية

    المصدر: Cancer Urology; Том 12, № 2 (2016); 53-57 ; Онкоурология; Том 12, № 2 (2016); 53-57 ; 1996-1812 ; 1726-9776 ; 10.17650/1726-9776-2016-12-2

    وصف الملف: application/pdf

    العلاقة: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/575/547Test; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/575/562Test; Воробьев А.В. Классификация и диагностика рака мочевого пузыря, вопросы дифференциальной диагностики. Практическая онкология 2003;4(4):196–203. [Vorob’yov A.V. Classification and diagnostics of bladder cancer, problems of differential diagnostics. Prakticheskaya onkologiya = Practical Oncology 2003;4(4):196–203. (In Russ.)].; Аполихин О.И., Сивков А.В., Москалева Н.Г. и др. Анализ уронефрологической заболеваемости и смертности в Российской Федерации в 2010–2011 годах. Экспериментальная и клиническая урология 2013;(2):10–7. [Apolikhin O.I., Sivkov A.V., Moskalyova N.G. et al. Analysis of urological and nephrological morbidity and lethality in Russian Federation in 2010–2011. Eksperimental’naya i klinicheskaya urologiya = Experimental and Clinical Urology 2013;(2):10–7. (In Russ.)].; Чиссов В.И., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2011 году (заболеваемость и смертность). М.: ФГБУ «МНИОИ им. П.А. Герцена» Минздрава России, 2013. 289 с. [Chissov V.I., Starinskiy V.V., Petrova G.V. Malignant tumors in Russia in 2011 (morbidity and lethality). Moscow: FSBI “P.A. Hertzen Moscow Cancer Research Institute” at the Ministry of Health of Russia, 2013. 289 p. (In Russ.)].; Аль-Шукри С.Х., Корнеев И.А. Общие принципы лечения больных раком мочевого пузыря. Значение клинических, гистологических и биологических факторов прогноза для выбора метода лечения. Практическая онкология 2003;4(4):204–13. [Al’-Shukri S.Kh., Korneev I.A. Common principles of treatment of patients with bladder cancer. The role of clinical, histological and biological prognostic factors for choosing of the method of treatment. Prakticheskaya onkologiya = Practical Oncology 2003;4(4):204–13. (In Russ.)].; Имянитов Е.Н., Хансон К.П. Эпидемиология и биология рака мочевого пузыря. Практическая онкология 2003;4(4):191–5. [Imyanitov E.N., Khanson K.P. Epidemiology and biology of bladder cancer. Prakticheskaya onkologiya = Practical Oncology 2003;4(4):191–5. (In Russ.)].; Клиническая онкоурология. Под ред. Б.П. Матвеева. М., 2011. [Clinical oncourology. Ed. by B.P. Matveev. Moscow, 2011. (In Russ.)].; Клинические рекомендации Европейской ассоциации урологов, 2014. [Clinical Recommendations of European Association of Urology, 2014. (In Russ.)].; Хабалов Р.В., Матвеев В.Б., Волкова М.И., Носов Д.А. Лечение и прогноз больных переходноклеточным раком мочевого пузыря с метастазами в регионарные лимфоузлы. Онкоурология 2007;(4):30–5. [Khabalov R.V., Matveev V.B., Volkova M.I., Nosov D.A. Treatment and prognosis in patients with transitional cell carcinoma of the bladder with metastasis in regional lymphatic nodes. Onkourologiya = Cancer Urology 2007;(4):30–5. (In Russ.)].; Jussila L., Alitalo K. Vascular growth factors and lymphangiogenesis. Physiol Rev 2002;82(3):673–700.; Mandriota S.J., Jussila L., Jeltsch M. et al. Vascular endothelial growth factor-C- mediated lymphangiogenesis promotes tumour metastasis. EMBO J 2001;20(4):672–82.; Folkman J. Is angiogenesis an organizing principle in biology and medicine? J Pediatr Surg 2007;42(1):1–11.; Ishikawa M., Kitayama J., Kazama S., Nagawa H. The expression pattern of vascular endothelial growth factor С and D in human esophageal normal mucosa, dysplasia and neoplasia. Hepatogastroenterology 2004;51(59):1319–22.; Carson-Walter E.B., Watkins D.N., Nanda A. et al. Cell surface tumor endothelial markers are conserved in mice and humans. Cancer Res 2010;61(18):6649–55.; Li N., Kanda K., Fukumori Т. et al. Expression of vascular endothelial growth factor isoforms and platelet-derived endothelial cell growth factor in bladder cancer. Urol Oncol 2000;6(1):10–5.; Streeter E.H., Harris A.L. Angiogenesis in bladder cancer – prognostic marker and target for future therapy. Surg Oncol 2002;11(1–2):85–100.; Italiano J.E., Richardson J.L., Patel-Hett S. et al. Angiogenesis is regulated by a novel mechanism: pro- and antiangiogenic proteins are organized into separate platelet granules and differentially released. Blood 2007;111(3):1227–33.; Мационис Э.Я., Ягубянц Ю.Т., Медведев В.Л. Молекулярная биология рака мочевого пузыря: дань моде или необходимость? Практическая онкология 2004; (2):64–6. [Matsionis E.Ya., Yagubyants Yu.T., Medvedev V.L. Molecular biology of bladder cancer: the latest fashion or necessity? Prakticheskaya onkologiya = Practical Oncology 2004;(2):64–6. (In Russ.)].; Мнихович М.В., Гершзон Д., Брикман М. и др. Морфогенетические механизмы клеточных взаимодействий в процессе ангиогенеза. Журнал анатомии и гистопатологии 2012;1(3):63–5. [Mnikhovich M.V., Gershzon D., Brickman M. et al. Morphological and genetic mechanisms of cell interaction in angiogenesis. Zhurnal anatomii i gistopatologii = Journal of Anatomy and Histopathology 2012;1(3): 63–5. (In Russ.)].; Lee S., Chen T.T., Barber C.L. et al. Autocrine VEGF signaling is required for vascular homeostasis. Cell 2007;130(4):691–703.; Глыбочко П.В., Шахпазян Н.К., Понукалин А.Н., Захарова Н.Б. Молекулярные маркеры в диагностике мышечно-неинвазивного рака мочевого пузыря. Клиническая лабораторная диагностика 2011;(5):16–20. [Glybochko P.V., Shakhpazyan N.K., Ponukalin A.N., Zakharova N.B. Molecular markers in diagnostics of non-muscle-invasive bladder cancer. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika = Clinical Laboratory Diagnostics 2011;(5):16–20. (In Russ.)].; Понукалин А.Н., Попков В.М., Захарова Н.Б., Михайлов В.Ю. Онкомаркеры в диагностике стадии инвазии рака мочевого пузыря. Медицинский вестник Башкортостана 2013;8(2):213–7. [Ponukalin A.N., Popkov V.M., Zakharova N.B., Mikhaylov V.Yu. Oncologic markers in diagnostics of the stage of bladder cancer invasion. Meditsinskiy vestnik Bashkortostana = Bashkortostan Medical Bulletin 2013;8(2):213–7. (In Russ.)].; van Rhijn B.W., Burger M., Lotan Y. et al. Recurrence and progression of disease in non-muscle-invasive bladder cancer: from epidemiology to treatment strategy. Eur Urol 2009;56(3):430–42.; Peterson J., Zurakowski D., Joseph E. et al. Normal ranges of angiogenesis regulatory proteins in human platelets. Am J Hematol 2010;85(7):487–93.; Rafii S., Lyden D. Therapeutic stem and progenitor cell transplantation for organ vascularization and regeneration. Nat Med 2003;9(6):702–12.; Theodorescu D. Molecular pathogenesis of urothelial bladder cancer. Histol Histopathol 2003;18(1): 259–74.; Folkman J. Role of angiogenesis in tumor growth and metastasis. Semin Oncol 2002;29(Suppl 16):15–8.; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/575Test

  8. 8
  9. 9
    دورية أكاديمية
  10. 10
    دورية أكاديمية