المؤلفون: A. S. Lyzhin, I. V. Luk’yanchuk, А. С. Лыжин, И. В. Лукъянчук

المساهمون: This work was supported by the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation under Agreement No. 075-15-2021-1050 of Sept. 28, 2021 within the framework of the project entitled “National network collection of plant genetic resources for effective scientific and technical development of the Russian Federation in the sphere of genetic technologies”.

المصدر: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 28, № 2 (2024); 166-174 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 28, № 2 (2024); 166-174 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-24-15

مصطلحات موضوعية: QTL, powdery mildew, resistance, molecular markers, мучнистая роса, устойчивость, молекулярные маркеры

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4086/1823Test; Bajpai S., Shukla P.S., Asiedu S., Pruski K., Prithiviraj B. A biostimulant preparation of brown seaweed Ascophyllum nodosum suppresses powdery mildew of strawberry. Plant Pathol. J. 2019;35(5): 406-416. DOI 10.5423/PPJ.OA.03.2019.0066; Carisse O., Bouchard J. Age-related susceptibility of strawberry leaves and berries to infection by Podosphaera aphanis. Crop Prot. 2010;29(9):969-978. DOI 10.1016/j.cropro.2010.03.008; Cockerton H.M., Vickerstaff R.J., Karlström A., Wilson F., Sobczyk M., He J.Q., Sargent D.J., Passey A.J., McLeary K.J., Pakozdi K., Harrison N., Lumbreras-Martinez M., Antanaviciute L., Simpson D.W., Harrison R.J. Identification of powdery mildew resistance QTL in strawberry (Fragaria × ananassa). Theor. Appl. Genet. 2018;131(9):1995-2007. DOI 10.1007/s00122-018-3128-0; Davik J., Honne B.I. Genetic variance and breeding values for resistance to a wind-borne disease [Sphaerotheca macularis (Wall. ex Fr.)] in strawberry (Fragaria × ananassa Duch.) estimated by exploring mixed and spatial models and pedigree information. Theor. Appl. Genet. 2005;111(2):256-264. DOI 10.1007/s00122-005-2019-3; Feng J., Cheng Y., Zheng C. Expression patterns of octoploid strawberry TGA genes reveal a potential role in response to Podosphaera aphanis infection. Plant Biotechnol. Rep. 2020;14:55-67. DOI 10.1007/s11816-019-00582-9; Gorgitano M.T., Pirilli M. Life cycle economic and environmental assessment for a greening agriculture. Qual. – Access Success. 2016; 17(S1):181-185; Govorova G.F., Govorov D.N. Strawberry: Past, Present, Future. Moscow: Rosinformagrotekh Publ., 2004 (in Russian); Holod N., Semenova L. Susceptibility of strawberry varieties to powdery mildew. Plodovodstvo i Vinogradarstvo Yuga Rossii = Fruit Growing and Viticulture of South Russia. 2014;25(01):111-115 (in Russian); Je H.J., Ahn J.W., Yoon H.S., Kim M.K., Ryu J.S., Hong K.P., Lee S.D., Park Y.H. Development of cleaved amplified polymorphic sequence (CAPS) marker for selecting powdery mildew-resistance line in strawberry (Fragaria × ananassa Duchesne). Korean J. Hortic. Sci. Technol. 2015;33(5):722-729. DOI 10.7235/hort.2015.14133; Kennedy C., Hasing T.N., Peres N.A., Whitaker V.M. Evaluation of strawberry species and cultivars for powdery mildew resistance in open-field and high tunnel production systems. HortScience. 2013; 48(9):1125-1129. DOI 10.21273/HORTSCI.48.9.1125; Kennedy C., Osorio L.F., Peres N.A., Whitaker V.M. Additive genetic effects for resistance to foliar powdery mildew in strawberry revealed through divergent selection. J. Am. Soc. Hortic. Sci. 2014; 139(3):310-316. DOI 10.21273/JASHS.139.3.310; Koishihara H., Enoki H., Muramatsu M., Nishimura S., Susumu Y.U.I., Honjo M. Marker associated with powdery mildew resistance in plant of genus Fragaria and use thereof. U.S. Patent No. 10,724,093. Washington, DC: U.S. Patent and Trademark Office. 2020 Lifshitz C., David N., Shalit N., Slotzky S., Tanami Z., Elad Y., Dai N. Inheritance of powdery mildew resistance in strawberry lines from the Israeli germplasm collection. In: Proceedings of the NASS/ NASGA conference (February 9-12, 2007, Ventura, California). Los Angeles, 2007;74-76; Liu J., Duan K., Zhang Q., Ye Z., Gao Q. Genetic mapping and preliminary analysis of SSR marker for powdery mildew resistance in strawberry. Acta Agriculturae Jiangxi. 2012;24(11):49-52; Luk’yanchuk I.V., Lyzhin A.S., Kozlova I.I. Analysis of strawberry genetic collection (Fragaria L.) for Rca2 and Rpf1 genes with molecular markers. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018;22(7):795-799. DOI 10.18699/VJ18.423 (in Russian); Lyzhin A.S., Luk’yanchuk I.V. Analysis of polymorphism of strawberry genotypes (Fragaria L.) according to the strawberry red root spot resistance gene Rpf1 for identification of strawberry forms promising for breeding and horticulture. Vestsі Natsyyanal’nay Akademіі Navuk Belarusі. Seryya Agrarnykh Navuk = Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Agrarian Series. 2020; 58(3):311-320. DOI 10.29235/1817-7204-2020-58-3-311-320 (in Russian); Lyzhin A.S., Luk’yanchuk I.V., Zhbanova E.V. Polymorphism of the Rca2 anthracnose resistance gene in strawberry cultivars (Fragaria × ananassa). Trudy po Prikladnoy Botanike, Genetike i Sel ek tsii = Proceedings on Applied Botany, Genetics, and Breeding. 2019; 180(1):73-77. DOI 10.30901/2227-8834-2019-1-73-77 (in Russian); Nelson M.D., Gubler W.D., Shaw D.V. Inheritance of powdery mildew resistance in greenhouse-grown versus field-grown California strawberry progenies. Phytopathology. 1995;85(4):421-424; Palmer M.G., Holmes G.J. Fungicide sensitivity in strawberry powdery mildew caused by Podosphaera aphanis in California. Plant Dis. 2021;105(9):2601-2605. DOI 10.1094/PDIS-12-20-2604-RE; Sargent D.J., Buti M., Šurbanovski N., Brurberg M.B., Alsheikh M., Kent M.P., Davik J. Identification of QTLs for powdery mildew (Podosphaera aphanis; syn. Sphaerotheca macularis f. sp. fra - ga riae) susceptibility in cultivated strawberry (Fragaria × ananassa). PloS One. 2019;14(9):e0222829. DOI 10.1371/journal.pone.0222829; Sombardier A., Dufour M.-C., Blancard D., Corio-Costet M.-F. Sensitivity of Podosphaera aphanis isolates to DMI fungicides: distribution and reduced cross-sensitivity. Pest Manag. Sci. 2010;66:35-43. DOI 10.1002/ps.1827 Stolnikova N.P., Kolesnikova A.V. Variety resistance of strawberry to powdery mildew in conditions of the south of Western Siberia. Sadovodstvo i Vinogradarstvo = Horticulture and Viticulture. 2017;5: 49-51. DOI 10.18454/VSTISP.2017.5.7593 (in Russian); Sylla J., Alsanius B.W., Krüger E., Becker D., Wohanka W. In vitro compatibility of microbial agents for simultaneous application to control strawberry powdery mildew (Podosphaera aphanis). Crop Prot. 2013;51:40-47. DOI 10.1016/j.cropro.2013.04.011; Tapia R.R., Barbey C.R., Chandra S., Folta K.M., Whitaker V.M., Lee S. Evolution of the MLO gene families in octoploid strawberry (Fragaria × ananassa) and progenitor diploid species identified potential genes for strawberry powdery mildew resistance. Hortic. Res. 2021;8(1):153. DOI 10.1038/s41438-021-00587-y; Whitaker V.M., Osorio L.F., Hasing T., Gezan S. Estimation of genetic parameters for 12 fruit and vegetative traits in the University of Florida strawberry breeding population. J. Am. Soc. Hortic. Sci. 2012;137(5):316-324. DOI 10.21273/JASHS.137.5.316; Zhuchenko A.A. Biologization and ecologization of intensification processes in agriculture. Vestnik OrelGAU = Bulletin of Orel State Agrarian University. 2009;3:8-12 (in Russian); Zubov A.A. Genetic Features and Breeding of Strawberry. Michur insk, 1990 (in Russian); Zubov A.A. Theoretical Foundations of Strawberry Breeding. Michurinsk: Michurin All-Russia Institute for the Genetics and Breeding of Fruit Plants, 2004 (in Russian); https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4086Test

الإتاحة: https://doi.org/10.18699/vjgb-24-19Test
https://doi.org/10.18699/vjgb-24-15Test
https://doi.org/10.18699/VJ18.423Test
https://doi.org/10.29235/1817-7204-2020-58-3-311-320Test
https://doi.org/10.30901/2227-8834-2019-1-73-77Test
https://doi.org/10.1002/ps.1827Test
https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4086Test

المؤلفون: I. B. Korottseva, S. N. Belov, M. E. Sletova, И. Б. Коротцева, С. Н. Белов, М. Е. Слетова

المصدر: Vegetable crops of Russia; № 1 (2024); 61-67 ; Овощи России; № 1 (2024); 61-67 ; 2618-7132 ; 2072-9146

مصطلحات موضوعية: настоящая мучнистая роса, breeding, tolerance, powdery mildew, линия, селекция, толерантность

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2332/1530Test; Ахатов А.К. Мир огурца глазами фитопатолога. М.: Тов-во науч. Изданий «КМК». 2020. 320 с.; Павлова О.В., Шевкунов В.Н., Дорогина Д.Д., Благородова Е.Н. Оценка перспективных гибридов огурца НИИОЗГ по урожайности, хозяйственно-ценным признакам и устойчивости к н.м.р. в летне-осеннем обороте остекленных теплиц. Овощеводство – от теории к практике. 2018. С.34-37. EDN XQWEST.; Налобова В.Л. Селекция огурца на устойчивость к болезням. Минск: ООО «Белпринт», 2005. 200 с.; Кокоулина Е.М. Болезни огурца при малообъемной технологии выращивания. Защита и карантин растений. 2008;(4):50. EDN LPWPZL.; Налобова В.Л., Павлова И.В., Ивановская М.В. Дифференциация видового состава возбудителей мучнистой росы тыквенных культур. Земледелие и растениеводство. 2018;(1):44-47.; Слетова М.Е. Видовой состав возбудителей настоящей мучнистой росы тыквенных культур. Овощи России. 2022;(4):91-97. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-4-91-97Test. EDN NBIFTP.; Гладышко С.Н., Кушнерева В.П., Корганова Н.Н. Исходный материал для селекции огурца с групповой устойчивостью к болезням. Селекцияи семеноводство овощных культур. 2002;(37):60-64.; Braun U., Cook R.T.A., Inman A.J., Shin H.D. The Taxonomy of the Powdery Mildew Fungi. in: The Powdery mildews: A Comprehensive Treatise. 2002;(1):13-55. ISBN: 9780890542910.; Kooistra E. Powdery mildew resistance in cucumber. Euphytica. 1968;17(2):236-244.; Стрельникова Т.Р., Маштакова А.Х., Руденко Н.М. Создание исходных форм тепличных огурцов, устойчивых к мучнистой росе. Вопросы частной генетики и селекции овощных культур: Тезисы докладов научно-производственной конференции. Молд. НИИОЗиО. Кишинёв. 1974. С. 142-144.; Jiahua X., Wehner T.C. Gene List 2001 for Cucumber. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2001;(24):110-136.; Shanmugasundarum S., Williams P.H., Peterson C.E. Inheritance of resistance to powdery mildew in cucumber. Phytopathology. 1971;(61):1218-1221.DOI:10.1094/Phyto-61-1218.; Пивоваров В.Ф., Юрина О.В. Видовой состав и особенности развития мучнистой росы огурцов в условиях Московской обл. Труды молодых ученых по селекции и семеноводству овощных культур. М., 1970. Вып. 3. С. 81-85.; Пивоваров В.Ф. Мучнистая роса огурца в пленочных теплицах. Труды молодых ученых и аспирантов по селекции и семеноводству овощных культур. ВНИИССОК. М., 1971. Вып.4. С. 53-54.; Юрина О.В., Пивоваров В.Ф., Балашова Н.Н. Селекция и семеноводство тыквенных культур в России. Москва, 1998. 423 с.; Бакланова О.В., Чистякова Л.А. Коллекционные образцы партенокарпических и пчелоопыляемых гибридов огурца – исходный материал для селекции новых гетерозисных гибридов. Известия ФНЦО. 2022;(2):45-53. DOI 10.18619/2658-4832-2022-2-45-53. EDN IXCCIH.; Шамшина А. В. Партенокарпические гибриды F1 огурца с бугорчатыми плодами для пленочных теплиц. Гавриш. 2009;(6):2-5.; Хомченко Н.Н., Шевкунов В.Н., Муляр В.Н., Плужник И.С., Курепин А.В. Создание короткоплодных партенокарпических линий огурца гладкого типа. Овощи России. 2022;(1):24-32. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-1-24-32Test. EDN FRBBGZ.; Рекомендации и методические указания по селекции и семеноводству огурца. М.: ВНИИССОК, 1999. 243 с.; Широкий унифицированный классификатор СЭВ и международный классификатор СЭВ вида Cucumis sativus L. Л., 1980. 28с.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2332Test

الإتاحة: https://doi.org/10.18619/2072-9146-2024-1-61-67Test
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-4-91-97Test
https://doi.org/10.1094/Phyto-61-1218Test
https://doi.org/10.18619/2658-4832-2022-2-45-53Test.
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2022-1-24-32Test
https://www.vegetables.su/jour/article/view/2332Test

المؤلفون: Агеева Е.В, Капко Т.Н., Советов В.В.

المصدر: Письма в Вавиловский журнал генетики и селекции, Vol 9, Iss 1, Pp 21-29 (2023)

مصطلحات موضوعية: устойчивость, яровая пшеница, мучнистая роса, бурая ржавчина, пыльная головня, Genetics, QH426-470

وصف الملف: electronic resource

العلاقة: https://pismavavilov.ru/wp-content/uploads/2023/04/005-PVJ-Ageeva_9-1.pdfTest; https://doaj.org/toc/2686-8482Test

الوصول الحر: https://doaj.org/article/7334ab74903c44e087f0ca076c12c32fTest

المؤلفون: Т.П. Федулова, Т.С. Руденко

مصطلحات موضوعية: сахарная свёкла, мучнистая роса, гены устойчивости, однонуклеотидные замены, гибриды, специфические праймеры., sugar beet, powdery mildew, resistance genes, single-nucleotide substitutions, hybrids, specific primers.

الإتاحة: https://doi.org/10.24412/2413-5518-2024-3-30-33Test
https://cyberleninka.ru/article/n/molekulyarnye-variatsii-gena-ustoychivosti-k-muchnistoy-rose-pmr5-u-genotipov-saharnoy-svyoklyTest

المؤلفون: E. S. Doroshenko, N. V. Shishkin

المصدر: Зерновое хозяйство России, Vol 0, Iss 6, Pp 103-108 (2022)

مصطلحات موضوعية: озимый ячмень, устойчивость, толерантность, патоген, мучнистая роса, головневые заболевания, Agriculture (General), S1-972

وصف الملف: electronic resource

العلاقة: https://www.zhros.online/jour/article/view/2091Test; https://doaj.org/toc/2079-8725Test; https://doaj.org/toc/2079-8733Test

الوصول الحر: https://doaj.org/article/cd1749e2da63491f98f5bbd9ee818447Test

المؤلفون: Danil F. Askhadullin, Damir F. Askhadullin, N. Z. Vasilova, M. R. Tazutdinova, I. I. Khusainova, E. Z. Bagavieva, O. A. Baranova

المصدر: Зерновое хозяйство России, Vol 0, Iss 3, Pp 89-94 (2022)

مصطلحات موضوعية: пшеница, болезни, мучнистая роса, ржавчина, твердая головня, устойчивость, Agriculture (General), S1-972

وصف الملف: electronic resource

العلاقة: https://www.zhros.online/jour/article/view/1924Test; https://doaj.org/toc/2079-8725Test; https://doaj.org/toc/2079-8733Test

الوصول الحر: https://doaj.org/article/f2223403b88d4d3fa1d8cc8147b9257bTest

المؤلفون: T. G. Derova, N. V. Shishkin, O. S. Kononenko, N. E. Samofalova

المصدر: Зерновое хозяйство России, Vol 0, Iss 2, Pp 89-94 (2022)

مصطلحات موضوعية: озимая твердая пшеница, мучнистая роса, бурая ржавчина, устойчивость, инфекционные фоны, Agriculture (General), S1-972

وصف الملف: electronic resource

العلاقة: https://www.zhros.online/jour/article/view/1751Test; https://doaj.org/toc/2079-8725Test; https://doaj.org/toc/2079-8733Test

الوصول الحر: https://doaj.org/article/a6ed534fcf8946e68af8a6e17f0ae23aTest

المؤلفون: A. D. Zastavnyuk, G. F. Monakhos, S. G. Monakhos, А. Д. Заставнюк, Г. Ф. Монахос, С. Г. Монахос

المصدر: Vegetable crops of Russia; № 4 (2023); 13-22 ; Овощи России; № 4 (2023); 13-22 ; 2618-7132 ; 2072-9146

مصطلحات موضوعية: удвоенные гаплоиды, Brassica rapa ssp. pekinensis, clubroot, P.brassicae, powdery mildew, resistance, molecular genetic analysis, doubled haploids, кила, мучнистая роса, устойчивость, молекулярно-генетический анализ

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2200/1470Test; Артемьева А.М., Соловьева А.Е. Генетическое разнообразие и биохимическая ценность капустных овощных растений рода Brassica L. Вестник НГАУ. Биология. 2018;4(49):50-61. DOI:10.31677/2072-6724-2018-49-4-50-61 [Artem'eva A.M., Soloveva A.E. Genetic diversity and biochemical value of cabbage vegetable plants of the genus Brassica L. Vestnik NGAU. Biologiya. 2018;4(49):50-61. DOI:10.31677/2072-6724-2018-49-4-50-61 (In Russ.)]; Yuan J., Shen C., Yuan R. et al. Identification of genes related to tipburn resistance in Chinese cabbage and preliminary exploration of its molecular mechanism. BMC Plant Biol. 2021;567(21):1-12. DOI:10.1186/s12870-021-03303-z; Kamiński P., Podwyszyńska, M., Starzycki M. et al. Interspecific hybridisation of cytoplasmic male-sterile rapeseed with Ogura cytoplasm and Brassica rapa var. pekinensis as a method to obtain male-sterile Chinese cabbage inbred lines. Euphytica. 2016;(208):519–534. DOI:10.1007/s10681-015-1595-9; Заставнюк А.Д., Монахос Г.Ф., Вишнякова А.В., Миронов А.А., Монахос С.Г. Генотипирование устойчивости к киле и оценка комбинационной способности капусты пекинской. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2022;(5):77- 91. DOI:10.26897/0021-342X-2022-5-77-91. EDN WDBKXQ. [Zastavnyuk A.D., Monakhos G.F., Vishnyakova A.V., Mironov A.A., Monakhos S.G. Chinese cabbage clubroot resistance genotyping and evaluation of combining ability. Izvestiya of Timiryazev Agricultural Academy. 2022;(5):77-91. (In Russ.)] EDN WDBKXQ.; Беренсен Ф.А., Антонова О.Ю., Артемьева А.М. Достижения и перспективы молекулярно-генетического маркирования устойчивости к некоторым патогенам у видов рода Brassica L. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019;23(6):656-666. DOI:10.18699/VJ19.538. [Berensen F.A., Antonova O.Yu., Artemeva A.M. Achievements and prospects of molecular genetic marking of resistance to certain pathogens in species of the genus Brassica L. Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2019;23(6):656-666. DOI:10.18699/VJ19.538 (In Russ.)]; Монахос С.Г., Воронина А.В., Байдина А.В., Зубко О.Н. Селекция растений на устойчивость–основа защиты от болезней в органическом земледелии. Картофель и овощи. 2019;(6):38-40. DOI:10.25630/PAV.2019.92.83.009 [Monahos S.G., Voronina A.V., Bajdina A.V., Zubko O.N. Plant breeding for sustainability is the basis of protection against diseases in organic farming. Potato and vegetables. 2019;6:38-40 (In Russ.). DOI:10.25630/PAV.2019.92.83.009 (In Russ.)]; Монахос Г.Ф., Монахос С.Г. Капуста пекинская. Биологические особенности, генетика, селекция и семеноводство. Монография. Москва: Издательство РГАУ-МСХА имени КА Тимирязева; 2009. [Monakhos G.F., Monakhos S.G. Chinese cabbage Brassica rapa L.Em. Metzg. ssp. pekinensis (Lour.) Hanelt. Biological characteristics, genetics, breeding and seed production. Monograph]. M.: Izd-vo RGAU-MSKhA imeni K.A. Timiryazeva. 2009. 182 р. (In Russ.)]; Malinowski R., Truman W., Blicharz S. Genius architect or clever thief—How Plasmodiophora brassicae reprograms host development to establish a pathogen oriented physiological sink. Molecular Plant-Microbe Interactions. 2019;32(10):1259–1266. DOI:10.1094/MPMI-03-19-0069-CR; Wenjing R., Zhiyuan L., Fengqing H. et al. Utilization of Ogura CMS germplasm with the clubroot resistance Y. gene by fertility restoration and cytoplasm replacement in Brassica oleracea L. Horticulture research. 2020;(7):61. DOI:10.1038/s41438-020-0282-8; Yoshikawa H. Studies on breeding of clubroot resistance in cole [Cruciferae] crops. Bulletin of the National Research Institute of Vegetables, Ornamental Plants and Tea. Series A.(Japan). 1993;(7):1–165. ISSN: 0916-684X.; Matsumoto E., Yasui С., Ohi M., Tsukada M. Linkage analysis of RFLP markers for clubroot resistance and pigmentation in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis. Euphytica. 1998;104:79:86. DOI:10.1023/A:1018370418201; Kuginuki Y., Yoshikawa H., Hirai M. Variation in virulence of Plasmodiophora brassicae in Japan tested with clubroot-resistant cultivars of Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis). European Journal of Plant Pathology. 1999;(105):327-332. DOI:10.1023/A:1008705413127; Hirai M. Genetic analysis of clubroot resistance in Brassica rapa. Breeding science. 2006;(56):223–229. DOI:10.1270/jsbbs.56.223; Monakhos S.G., Li N.M. Breeding value of clubroot resistance genes of Brassica rapa L. lines and effectiveness of molecular markers of mapped loci. Izvestiya of Timiryazev Agricultural Academy (TAA). 2013;(6):68-81. (In Russ.)]; Ueno H. et al. Molecular characterization of the CRa gene conferring clubroot resistance in Brassica rapa. Plant molecular biology. 2012;80:621–629. DOI:10.1007/s11103–012–9971–5.; Kato T., Hatakeyama K., Fukino N. et al. Fine mapping of the clubroot resistance gene CRb and development of a useful selectable marker in Brassica rapa. Breeding science. 2013;63(1):116- 124. DOI:10.1270/jsbbs.73-1cover; Suwabe K., Tsukazaki H., Iketani H., Hatakeyama K., Fujimura M., Nunome T., Fukuoka H., Matsumoto S., Hirai M. Identification of two loci for resistance to clubroot (Plasmodiophora brassicae Woronin) in Brassica rapa L. Theoretical Application Genetic. 2003.107:997-1002. DOI:10.1007/s00122-003-1309-x; Nguen M.L., Monakhos G.F., Komahin R.A., Monakhos S.G. The new clubroot resistance locus is located on chromosome A05 in Chinese Cabbage (Brassica rapa L.). Genetika. 2018;54:296–304 (In Russ.) DOI:10.7868/S0016675818030037.; Monakhos S.G., Li N.M. Breeding of Chinese cabbage using biotechnological methods. Potato and vegetables. 2014;9:34-35. (In Russ.).; Dong Y.Q. Influencing factors and physiochemical changes of embryogenesis through in vitro isolated microspore culture in Brassica species. Biologia. 2021;(76):2629-2654. DOI:10.1007/s11756-021-00721-0; Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Супрунова Т.П. Получение удвоенных гаплоидов у видов рода Brassica L. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2015;19(1):111-120. DOI:10.18699/VJ15.014. [Shmykova N. A., Shumilina D.V., Suprunova T.P. Obtaining doubled haploids in species of the genus Brassica L. Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2015;19(1):111-120. DOI:10.18699/VJ15.014 (In Russ.)]; Monakhos S., Uwiragiye A., Zhao J., Zhang N., Bonnema G. Generation of doubled haploids through microspore culture from vegetable and oilseed Brassica rapa crops. Izvestiya of Timiryazev Agricultural Academy (TAA). 2010;7:128-135 (In Russ.).; Krishnia S.K., Saharan G.S.; Singh D. Genetics of Alternaria blight resistance in inter and intraspecific crosses of Brassica juncea and Brassica carinata. Annals of Biology. 2000;16(2):211- 216. ISSN: 0970-0153.; Conn K.L., Tewari J.P., Awasthi R.P. A disease assessment key for Alternaria blackspot in rapeseed and mustard. Disease des plantes Survey'au Canada. 1990;70(1):19–22. ISSN: 0008-476X; Monakhos S.G. Creation of pure lines-doubled cabbage haploids in the culture of isolated microspores and selection of F1 hybrids based on modern biotechnology methods: methodological recommendations]. M. 2014. 44 р. (In Russ.); Custers J.B.M. Microspore culture in rapeseed (Brassica napus L.). Doubledhaploid production in crop plants. Academic Publisher. 2003. Р.185-194. DOI:10.1007/978-94-017-1293-4_29; Murray M.G. and Thompson W.F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucleic acids research. 1980;8(19):4321- 4326. DOI:10.1093/nar/8.19.4321; Kato T., Hatakeyama K., Fukino N. & Matsumoto S. Identificaiton of a clubroot resistance locus conferring resistance to a Plasmodiophora brassicae classified into pathotype group 3 in Chinese cabbage (Brassica rapa L.). Breeding science. 2012;62(3):282-287. DOI:10.1270/jsbbs.62.282; Griffing B.А. Concept of general and specific combining ability in relation to diallel crossing systems. Australian journal of biological sciences. 1956;9(4):463-493. DOI:10.1071/BI9560463; Pechan P.M., Keller W.A. Identification of potentially embryogenic microspores in Brassica napus. Physiologia Plantarum. 1988;74(2):377-384. DOI:10.1111/j.1399-3054.1988.tb00646.x; Monakhos S.G. Integration of modern biotechnological and classical methods in vegetable crop breeding. Moscow, Russian State Agrarian University – Moscow Timiryazev Agricultural Academy. 2016. 335 р. (In Russ.).; Buczacki S., Toxopeus H., Mattusch P., Johnston T., Dixon G. & Hobolth L. Study of physiologic specialization in Plasmodiophora brassicae: proposals for attempted rationalization through an international approach. Transactions of the British Mycological Society. 1975;65(2):295-303. DOI:10.1016/S0007-1536(75)80013-1; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2200Test

الإتاحة: https://doi.org/10.18619/2072-9146-2023-4-13-22Test
https://doi.org/10.31677/2072-6724-2018-49-4-50-61Test
https://doi.org/10.1186/s12870-021-03303-zTest
https://doi.org/10.1007/s10681-015-1595-9Test
https://doi.org/10.26897/0021-342X-2022-5-77-91Test
https://doi.org/10.18699/VJ19.538Test
https://doi.org/10.25630/PAV.2019.92.83.009Test
https://doi.org/10.1094/MPMI-03-19-0069-CRTest
https://doi.org/10.1038/s41438-020-0282-8Test
https://doi.org/10.1023/A:1018370418201Test

المؤلفون: E. I. Zhuk, N. A. Krupenkо, A. A. Radyna, A. N. Khalaev, N. G. Poplavskaya, V. A. Radivon, Е. И. Жук, Н. А. Крупенько, А. А. Радына, А. Н. Халаев, Н. Г. Поплавская, В. А. Радивон

المصدر: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Agrarian Series; Том 61, № 3 (2023); 210-221 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия аграрных наук; Том 61, № 3 (2023); 210-221 ; 1817-7239 ; 1817-7204 ; 10.29235/1817-7204-2023-61-3

مصطلحات موضوعية: площадь под кривой развития болезни (ПКРБ), variety, root rot, by-root rot, powdery mildew, pyrenophorosis, septoriosis, fusarium, brown rust, area under disease process curve (AUDPC), сорт, корневая гниль, прикорневая гниль, мучнистая роса, пиренофороз, септориоз, фузариоз, бурая ржавчина

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/714/607Test; Роль микологических и фитопатологических исследований в решении проблемы повышения эффективности приемов защиты зерновых культур от болезней / А. Г. Жуковский [и др.] // Экологическая безопасность защиты растений: материалы междунар. науч. конф., посвящ. 105-летию со дня рождения чл.-корр. А. Л. Амбросова и 80-летию со дня рождения акад. В. Ф. Самерсова, Прилуки, 24–26 июля 2017 г. / Нац. акад. наук Беларуси, Науч.практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений; ред.: Л. И. Трепашко [и др.]. – Минск, 2017. – С. 92–101.; Жуковский, А. Г. Изменение фитопатологической ситуации в посевах зерновых культур / А. Г. Жуковский, Н. А. Крупенько // Наше сел. хоз-во. – 2020. – № 5. – С. 60–64.; Жуковский, А. Г. Фитопатологическая ситуация в посевах зерновых культур – основа для разработки систем защиты от болезней / А. Г. Жуковский, С. Ф. Буга // Интегрированная защита растений: стратегия и тактика: материалы междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 40-летию со дня организации РУП «Институт защиты растений» (Минск, 5–8 июля 2011 г.) / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений; редкол.: Л. И. Трепашко (гл. ред.) [и др.]. – Несвиж, 2011. – С. 592–594.; Роль пораженности сорта болезнями в обосновании тактики и экономики фунгицидных обработок зерновых культур в Республике Беларусь / С. Ф. Буга [и др.] // Земляробства i ахова раслiн. – 2012. – № 1. – С. 29–37.; Динамика развития болезней зерновых культур – основа эффективного использования химических средств защиты / С. Ф. Буга [и др.] // Земледелие и защита растений. – 2014. – № 3. – С. 37–44.; Пригге, Г. Грибные болезни зерновых культур / Г. Пригге, М. Герхард, И. Хабермайер; под ред. Ю. М. Стройкова. – Лимбургерхоф: Ландвиртшафтсферлаг Мюнстер-Хилтруп и БАСФ АГ, 2004. – 192 с.; Коршунова, А. Ф. Защита пшеницы от корневых гнилей / А. Ф. Коршунова, А. Е. Чумаков, Р. И. Щекочихина. – 2-е изд., перераб. и доп. – Л.: Колос, Ленингр. отд-ние, 1976. – 184 с.; Чумаков, А. Е. Вредоносность болезней сельскохозяйственных культур / А. Е. Чумаков, Т. И. Захарова. – М.: Агропромиздат, 1990. – 127 с.; Шипилова, Н. П. Диагностика фузариозного поражения колоса и заражения зерна на северо-западе России / Н. П. Шипилова, Л. И. Нефедова, В. Г. Иващенко // Сборник методических рекомендаций по защите растений / Всерос. НИИ защиты растений; гл. ред. К. В. Новожилов. – СПб., 1998. – С. 208–220; Теоретические и методологические принципы создания ржавчиноустойчивых сортов пшеницы / Л. К. Анпилогова [и др.] // Агрохимия. – 2002. – № 5. – С. 77–88.; Методы селекции и оценки устойчивости пшеницы и ячменя к болезням в странах – членах СЭВ / Л. Т. Бабаянц [и др.]. – Прага, 1988. – 321 с.; Wilcoxson, R. D. Slow rusting of wheat varieties in the field correlated with stem rust severity on detached leaves in the green house / R. D. Wilcoxson, A. H. Atif, B. Skowmand // Plant Dis. Report. – 1975. – Vol. 58, № 12. – P. 1085–1087.; Справочник по климату Беларуси / Респ. центр по гидрометеорологии, контролю радиоактив. загрязнения и мониторингу окружающей среды; подгот.: Е. В. Комаровская (отв. исп.) [и др.]. – Минск: [б. и.], 2017. – Ч. 1: Температура воздуха и почвы. – 85 с.; Справочник по климату Беларуси / Респ. центр по гидрометеорологии, контролю радиоактив. загрязнения и мониторингу окружающей среды; подгот.: Е. В. Комаровская (отв. исп.) [и др.]. – Минск: [б. и.], 2017. – Ч. 2: Осадки. – 64 с.; Корневая гниль зерновых культур и роль инфицированности семян в ее развитии / А. Г. Жуковский [и др.] // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Минск, 2018. – Вып. 42. – С. 84–95.; Роль сорта в формировании видового разнообразия грибов рода Fusarium в агроценозах яровых зерновых культур Республики Беларусь / С. Ф. Буга [и др.] // Защита растений: сб. науч. тр. / Белорус. науч.-исслед. ин-т защиты растений. – Минск, 2000. – Вып. 24. – С. 48–54.; Петрова, Л. К. Видовой состав грибов-возбудителей корневой гнили яровой пшеницы в условиях Белоруссии / Л. К. Петрова // Фитосанитарное оздоровление экосистем: второй Всерос. съезд по защите растений, 5–10 дек. 2005 г.: материалы съезда: в 2 т. / Всерос. науч.-исслед. ин-т защиты растений; редкол.: В. А. Павлюшин (гл. ред.) [и др.]. – СПб., 2005. – Т. 1. – С. 200–202.; Справочник болезней зерновых культур / Н. А. Крупенько [и др.]; под ред. Н. А. Крупенько, А. Г. Жуковского, С. Ф. Буга. – Минск: Журн. «Белорусское сельское хозяйство», 2021. – 81 с.; Пилат, Т. Г. Церкоспореллезная корневая гниль зерновых культур и состояние изученности этой проблемы (литературный обзор) / Т. Г. Пилат, Н. А. Крупенько, С. Ф. Буга // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Минск, 2021. – Вып. 45. – С. 153–160. https://doiTest. org/10.47612/0135-3705-2021-45-153-160; Zhuk, E. I. Najważniejsze choroby grzybowe pszenicy jarej w warunkach Bialorusi / E. I. Zhuk, S. V. Buga, A. G. Zhukovsky // 53. Sesja Naukowa / Inst. Ochrony Roślin Państwowego Inst. Badawczego. – Poznań, 2013. – S. 194–196.; Фитопатологическая ситуация в посевах зерновых культур / А. Г. Жуковский [и др.] // Современные ресурсосберегающие технологии производства растениеводческой продукции в Беларуси: сб. науч. материалов / Нац. акад. наук Беларуси, Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию редкол.: Ф. И. Привалов [и др.]. – 3-е изд., доп. и перераб. – Минск, 2017. – С. 186–191.; Фитопатологическая ситуация в посевах зерновых культур на территории Республики Беларусь / А. Г. Жуковский [и др.] // Земледелие и защита растений. – 2017. – № 2 (111). – С. 9–12.; Жук, Е. И. Пораженность районированных сортов яровой пшеницы основными болезнями в период вегетации в условиях Беларуси / Е. И. Жук // Актуальные проблемы изучения и сохранения фитои микобиоты: сб. ст. II междунар. науч.-практ. конф., 12–14 нояб. 2013 г., г. Минск / Белорус. гос. ун-т, Ин-т эксперим. ботаники НАН Беларуси, Центр. ботан. сад НАН Беларуси; редкол.: В. В. Лысак [и др.]. – Минск, 2013. – С. 248–251.; Распространенность возбудителей листовых пятнистостей пшеницы (Pyrenophora tritici-repentis и Septoria tritici) в условиях Северного Кавказа и Республики Беларусь / О. Ю. Кремнева [и др.] // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Несвиж, 2011. – Вып. 35. – С. 109–112.; Защита пшеницы от септориоза / С. С. Санин [и др.]. – М., 2012. – 24 с. – (Прил. к журн. «Защита и карантин растений» № 4, 2012 г.).; Септориозы зерновых культур и их вредоносность / Н. А. Крупенько [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусі. Сер. аграр. навук. – 2017. – № 4. – С. 66–75.; Крупенько, Н. А. Влияние гидротермических условий на развитие септориоза листьев озимой пшеницы / Н. А. Крупенько // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Минск, 2018. – Вып. 42. – С. 109–115.; Поражаемость районированных сортов зерновых культур возбудителями болезней листового аппарата в условиях Республики Беларусь и роль защиты в сохранении их урожайности / А. Г. Жуковский [и др.] // Современные иммунологические исследования, их роль в создании новых сортов и интенсификации растениеводства: материалы Всерос. науч.-произв. конф., Большие Вяземы, Моск. обл., 18 нояб. 2009 г. / Всерос. науч.-исслед. ин-т фитопатологии; под ред. С. С. Санина, А. А. Макарова. – Большие Вяземы, 2009. – С. 108–115.; Петрова, Л. К. Пораженность яровой пшеницы септориозом в условиях Беларуси / Л. К. Петрова // Защита растений: сб. науч. тр. / Ин-т защиты растений НАН Беларуси. – Минск, 2006. – Вып. 30, ч. 1: Стратегия и тактика защиты растений. – С. 283–285.; Жук, Е. И. Распространенность септориоза колоса яровой пшеницы в Беларуси / Е. И. Жук // Защита растений: сб. науч. тр. / Науч.-практ. центр НАН Беларуси по земледелию, Ин-т защиты растений. – Несвиж, 2007. – Вып. 31. – С. 127–135.; Жук, Е. И. Поражаемость сортов яровой пшеницы болезнями / Е. И. Жук // Современные технологии сельскохозяйственного производства: материалы XV Междунар. науч.-практ. конф. (Гродно, 18 мая 2012 г.) / Гродн. гос. аграр. ун-т. – Гродно, 2012. – Ч. 1: Агрономия. Защита растений. Зоотехния. Ветеринария. – С. 146–147.; Жук, Е. И. Особенности защиты сорта яровой пшеницы от болезней в условиях Республики Беларусь / Е. И. Жук // Зб. наук. пр. / Нац. акад. аграр. наук України, Ін-т біоенергет. культур і цукрових буряків. – Київ, 2012. – Вип. 14: Новiтнi технологii вирощування сiльскогосподарських культур. – С. 165–168.; Буга, С. Ф. Теоретические и практические основы химической защиты зерновых культур от болезней в Беларуси / С. Ф. Буга. – Несвиж: Несвиж. укрупн. тип. им. С. Будного, 2013. – 240 с.; https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/714Test

الإتاحة: https://doi.org/10.29235/1817-7204-2023-61-3-210-221Test
https://doi.org/10.29235/1817-7204-2023-61-3Test
https://doi.org/10.47612/0135-3705-2021-45-153-160Test
https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/714Test

المؤلفون: Т. G. Derova, N. V. Shishkin, О. S. Kononenko

المصدر: Зерновое хозяйство России, Vol 0, Iss 3, Pp 82-87 (2021)

مصطلحات موضوعية: мучнистая роса, устойчивость, восприимчивость, инфекционный фон, балл, сорт, Agriculture (General), S1-972

وصف الملف: electronic resource

العلاقة: https://www.zhros.online/jour/article/view/1265Test; https://doaj.org/toc/2079-8725Test; https://doaj.org/toc/2079-8733Test

الوصول الحر: https://doaj.org/article/c3bbd60fe3544d21b04b521bc67f15f4Test