المؤلفون: A. B. Villert, I. A. Kolomiets, Y. A. Fesik, A. A. Ivanova, N. V. Yunusova, О. N. Churuksaeva, А. Б. Виллерт, Л. А. Коломиец, Е. А. Фесик, А. A. Иванова, Н. В. Юнусова, О. Н. Чуруксаева

المصدر: Siberian journal of oncology; Том 21, № 4 (2022); 156-164 ; Сибирский онкологический журнал; Том 21, № 4 (2022); 156-164 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2022-21-4

مصطلحات موضوعية: повторный курс терапии PARP-ингибиторами, platinum-sensitive relapse, BRCA1, BRCA2 mutation, re-administration of PARP inhibitor therapy, платиночувствительный рецидив, BRCA2, мутация

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2240/1014Test; Максимов С.Я., Хаджимба А.С., Ильин А.А., Соболев И.В. Роль повторных лапаротомий в лечении больных злокачественными опухолями яичников. Практическая онкология. 2014; 15(4): 176–85.; Porhanova N.V., Sokolenko A.P., Sherina N.Y., Ponomariova D.N., Tkachenko N.N., Matsko D.E., Imyanitov E.N. Ovarian cancer patient with germline mutations in both BRCA1 and NBN genes. Cancer Genet Cytogenet. 2008; 186(2): 122–4. doi:10.1016/j.cancergencyto.2008.06.012.; Смирнова Т.Ю., Любченко Л.Н., Поспехова Н.И., Портной С.М., Жорданина К.И., Гарькавцева Р.Ф., Карпухин А.В. Рак молочной железы и яичников. Роль наследственных факторов. Tumors of the female reproductive system. 2007; 4: 90–6.; Федорова О.Е., Любченко Л.Н., Паяниди Ю.Г., Казубская Т.П., Амосенко Ф.А., Гарькавцева Р.Ф., Заседателев А.С., Наседкина Т.В. Использование биочипов при изучении распространенных мутаций в генах BRCA1/2 и CHEK2 у больных органоспецифическим раком яичников и первично-множественными злокачественными новообразованиями с поражением яичников (российская популяция). Молекулярная биология. 2007; 41(1): 37–42.; Анисименко М.С., Афанасьева Н.А., Часовникова О.Б., Красильников С.Э., Гуляева Л.Ф., Коваленко С.П. Анализ встречаемости мутации 5382insC в гене BRCA1 у больных раком яичников в Сибирском регионе. Сибирский онкологический журнал. 2013; 52(4): 39–42.; Tyulyandina A., Gorbunova V., Khokhlova S., Kolomiets L. Profile of BRCA1/BRCA2 mutations in Russian ovarian cancer population detected by NGS and MLPA analysis: Interim results of OVATAR study. Proc Am Assoc Cancer Res. 2018. 59: 320. doi: 0.1200/JCO.2019.37.15_suppl.e13111.; Zhang S., Royer R., Li S., McLaughlin J.R., Rosen B., Risch H.A., Fan I., Bradley L., Shaw P.A., Narod S.A. Frequencies of BRCA1 and BRCA2 mutations among 1,342 unselected patients with invasive ovarian cancer. Gynecol Oncol. 2011; 121(2): 353–7. doi:10.1016/j.ygyno.2011.01.020.; Pal T., Permuth-Wey J., Betts J.A., Krischer J.P., Fiorica J., Arango H., LaPolla J., Hoffman M., Martino M.A., Wakeley K., Wilbanks G., Nicosia S., Cantor A., Sutphen R. BRCA1 and BRCA2 mutations account for a large proportion of ovarian carcinoma cases. Cancer. 2005; 104(12), 2807–16. https://doi.org/10.1002/cncr.21536Test.; Kentwell M., Dow E., Antill Y., Wrede C.D., McNally O., Higgs E., Hamilton A., Ananda S., Lindeman G.J., Scott C.L. Mainstreaming cancer genetics: A model integrating germline BRCA testing into routine ovarian cancer clinics. Gynecol Oncol. 2017; 145(1): 130–6. doi:10.1016/j.ygyno.2017.01.030.; Alsop K., Fereday S., Meldrum C., deFazio A., Emmanuel C., George J., Dobrovic A., Birrer M.J., Webb P.M., Stewart C., Friedlander M., Fox S., Bowtell D., Mitchell G. BRCA mutation frequency and patterns of treatment response in BRCA mutation-positive women with ovarian cancer: a report from the Australian Ovarian Cancer Study Group. J Clin Oncol. 2012; 30(21): 2654–63. doi:10.1200/JCO.2011.39.8545.2012. Erratum in: J Clin Oncol.2012; 30(33): 4180.; Plaskocinska I., Shipman H., Drummond J., Thompson E., Buchanan V., Newcombe B., Hodgkin C., Barter E., Ridley P., Ng R., Miller S., Dann A., Licence V., Webb H., Tan L.T., Daly M., Ayers S., Rufford B., Earl H., Parkinson C., Duncan T., Jimenez-Linan M., Sagoo G.S., Abbs S., Hulbert-Williams N., Pharoah P., Crawford R., Brenton J.D., Tischkowitz M. New paradigms for BRCA1/BRCA2 testing in women with ovarian cancer: results of the Genetic Testing in Epithelial Ovarian Cancer (GTEOC) study. J Med Genet. 2016; 53(10): 655–61. doi:10.1136/jmedgenet-2016-103902.; Yang D., Khan S., Sun Y., Hess K., Shmulevich I., Sood A.K., Zhang W. Association of BRCA1 and BRCA2 mutations with survival, chemotherapy sensitivity, and gene mutator phenotype in patients with ovarian cancer. JAMA. 2011; 306(14): 1557–65. doi:10.1001/jama.2011.1456. Erratum in: JAMA. 2012 Jan 25; 307(4): 363.; Bolton K.L., Chenevix-Trench G., Goh C., Sadetzki S., Ramus S.J., Karlan B.Y., Lambrechts D., Despierre E., Barrowdale D., McGuffog L., Healey S., Easton D.F., Sinilnikova O., Benítez J., García M.J., Neuhausen S., Gail M.H., Hartge P., Peock S., Frost D., Evans D.G., Eeles R., Godwin A.K., Daly M.B., Kwong A., Ma E.S., Lázaro C., Blanco I., Montagna M., D’Andrea E., Nicoletto M.O., Johnatty S.E., Kjær S.K., Jensen A., Høgdall E., Goode E.L., Fridley B.L., Loud J.T., Greene M.H., Mai P.L., Chetrit A., Lubin F., Hirsh-Yechezkel G., Glendon G., Andrulis I.L., Toland A.E., Senter L., Gore M.E., Gourley C., Michie C.O., Song H., Tyrer J., Whittemore A.S., McGuire V., Sieh W., Kristoffersson U., Olsson H., Borg Å., Levine D.A., Steele L., Beattie M.S., Chan S., Nussbaum R.L., Moysich K.B., Gross J., Cass I., Walsh C., Li A.J., Leuchter R., Gordon O., Garcia-Closas M., Gayther S.A., Chanock S.J., Antoniou A.C., Pharoah P.D.; EMBRACE; kConFab Investigators; Cancer Genome Atlas Research Network. Association between BRCA1 and BRCA2 mutations and survival in women with invasive epithelial ovarian cancer. JAMA. 2012; 307(4): 382–90. doi:10.1001/jama.2012.20.; Liu J., Cristea M.C., Frankel P., Neuhausen S.L., Steele L., Engelstaedter V., Matulonis U., Sand S., Tung N., Garber J.E., Weitzel J.N. Clinical characteristics and outcomes of BRCA-associated ovarian cancer: genotype and survival. Cancer Genet. 2012; 205(1–2): 34–41. doi:10.1016/j.cancergen.2012.01.008.; Candido-dos-Reis F.J., Song H., Goode E.L., Cunningham J.M., Fridley B.L., Larson M.C., Alsop K., Dicks E., Harrington P., Ramus S.J., de Fazio A., Mitchell G., Fereday S., Bolton K.L., Gourley C., Michie C., Karlan B., Lester J., Walsh C., Cass I., Olsson H., Gore M., Benitez J.J., Garcia M.J., Andrulis I., Mulligan A.M., Glendon G., Blanco I., Lazaro C., Whittemore A.S., McGuire V., Sieh W., Montagna M., Alducci E., Sadetzki S., Chetrit A., Kwong A., Kjaer S.K., Jensen A., Høgdall E., Neuhausen S., Nussbaum R., Daly M., Greene M.H., Mai P.L., Loud J.T., Moysich K., Toland A.E., Lambrechts D., Ellis S., Frost D., Brenton J.D., Tischkowitz M., Easton D.F., Antoniou A., Chenevix-Trench G., Gayther S.A., Bowtell D., Pharoah P.D.; for EMBRACE; kConFab Investigators; Australian Ovarian Cancer Study Group. Germline mutation in BRCA1 or BRCA2 and ten-year survival for women diagnosed with epithelial ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2015; 21(3): 652–7. doi:10.1158/1078-0432.CCR-14-2497.; Fox E., McCuaig J., Demsky R., Shuman C., Chitayat D., Maganti M., Murphy J., Rosen B., Ferguson S., Randall Armel S. The sooner the better: Genetic testing following ovarian cancer diagnosis. Gynecol Oncol. 2015; 137(3): 423–9. doi:10.1016/j.ygyno.2015.03.057.; Tan D.S., Rothermundt C., Thomas K., Bancroft E., Eeles R., Shanley S., Ardern-Jones A., Norman A., Kaye S.B., Gore M.E. “BRCAness” syndrome in ovarian cancer: a case-control study describing the clinical features and outcome of patients with epithelial ovarian cancer associated with BRCA1 and BRCA2 mutations. J Clin Oncol. 2008; 26(34): 5530–6. doi:10.1200/JCO.2008.16.1703.; Adams S.F., Marsh E.B., Elmasri W., Halberstadt S., Vandecker S., Sammel M.D., Bradbury A.R., Daly M., Karlan B., Rubin S.C. A high response rate to liposomal doxorubicin is seen among women with BRCA mutations treated for recurrent epithelial ovarian cancer. Gynecol Oncol. 2011; 123(3): 486–91. doi:10.1016/j.ygyno.2011.08.032.; Lorusso D., Scambia G., Pignata S., Sorio R., Amadio G., Lepori S., Mosconi A., Pisano C., Mangili G., Maltese G., Sabbatini R., Artioli G., Gamucci T., Di Napoli M., Capoluongo E., Ludovini V., Raspagliesi F., Ferrandina G. Prospective phase II trial of trabectedin in BRCA-mutated and/or BRCAness phenotype recurrent ovarian cancer patients: the MITO 15 trial. Ann Oncol. 2016; 27(3): 487–93. doi:10.1093/annonc/mdv608.; Eisenhauer E.A., Vermorken J.B., van Glabbeke M. Predictors of response to subsequent chemotherapy in platinum pretreated ovarian cancer: a multivariate analysis of 704 patients [seecomments]. Ann Oncol. 1997; 8(10): 963–8. doi:10.1023/a:1008240421028.; Cannistra S.A. Cancer of the ovary. N Engl J Med. 2004; 351(24): 2519–29. doi:10.1056/NEJMra041842. Erratum in: N Engl J Med. 2005; 352(1):104.; George A., Kaye S., Banerjee S. Delivering widespread BRCA testing and PARP inhibition to patients with ovarian cancer. Nat Rev Clin Oncol. 2017; 14(5): 284–96. doi:10.1038/nrclinonc.2016.191.; Fong P.C., Yap T.A., Boss D.S., Carden C.P., Mergui-Roelvink M., Gourley C., De Greve J., Lubinski J., Shanley S., Messiou C., A’Hern R., Tutt A., Ashworth A., Stone J., Carmichael J., Schellens J.H., de Bono J.S., Kaye S.B. Poly(ADP)-ribose polymerase inhibition: frequent durable responses in BRCA carrier ovarian cancer correlating with platinum-free interval. J Clin Oncol. 2010; 28(15): 2512–9. doi:10.1200/JCO.2009.26.9589.; Swisher E.M., Lin K.K., Oza A.M., Scott C.L., Giordano H., Sun J., Konecny G.E., Coleman R.L., Tinker A.V., O’Malley D.M., Kristeleit R.S., Ma L., Bell-McGuinn K.M., Brenton J.D., Cragun J.M., Oaknin A., Ray-Coquard I., Harrell M.I., Mann E., Kaufmann S.H., Floquet A., Leary A., Harding T.C., Goble S., Maloney L., Isaacson J., Allen A.R., Rolfe L., Yelensky R., Raponi M., McNeish I.A. Rucaparib in relapsed, platinum-sensitive high-grade ovarian carcinoma (ARIEL2 Part 1): an international, multicentre, open-label, phase 2 trial. Lancet Oncol. 2017; 18(1): 75–87. doi:10.1016/S1470-2045(16)30559-9.; Ledermann J., Harter P., Gourley C., Friedlander M., Vergote I., Rustin G., Scott C.L., Meier W., Shapira-Frommer R., Safra T., Matei D., Fielding A., Spencer S., Dougherty B., Orr M., Hodgson D., Barrett J.C., Matulonis U. Olaparib maintenance therapy in patients with platinum-sensitive relapsed serous ovarian cancer: a preplanned retrospective analysis of outcomes by BRCA status in a randomised phase 2 trial. Lancet Oncol. 2014; 15(8): 852–61. doi:10.1016/S1470-2045(14)70228-1.; Farmer H., McCabe N., Lord C.J., Tutt A.N., Johnson D.A., Richardson T.B., Santarosa M., Dillon K.J., Hickson I., Knights C., Martin N.M., Jackson S.P., Smith G.C., Ashworth A. Targeting the DNA repair defect in BRCA mutant cells as a therapeutic strategy. Nature. 2005; 434(7035): 917–21. doi:10.1038/nature03445.; The European Medicines Agency [Internet]. 2014. URL: http://www.ema.europa.eu/ema/index.jsp?curl=pages/medicines/human/medicines/003726/human_med_001831.jsp&mid=WC0b01ac058001d124Test [cited 2022 Jan 11].; Mirza M.R., Monk B.J., Herrstedt J., Oza A.M., Mahner S., Redondo A., Fabbro M., Ledermann J.A., Lorusso D., Vergote I., Ben-Baruch N.E., Marth C., Mądry R., Christensen R.D., Berek J.S., Dørum A., Tinker A.V., du Bois A., González-Martín A., Follana P., Benigno B., Rosenberg P., Gilbert L., Rimel B.J., Buscema J., Balser J.P., Agarwal S., Matulonis U.A.; ENGOT-OV16/NOVA Investigators. Niraparib Maintenance Therapy in Platinum-Sensitive, Recurrent Ovarian Cancer. N Engl J Med. 2016; 375(22): 2154–64. doi:10.1056/NEJMoa1611310.; Coleman R.L., Oza A.M., Lorusso D., Aghajanian C., Oaknin A., Dean A., Colombo N., Weberpals J.I., Clamp A., Scambia G., Leary A., Holloway R.W., Gancedo M.A., Fong P.C., Goh J.C., O’Malley D.M., Armstrong D.K., Garcia-Donas J., Swisher E.M., Floquet A., Konecny G.E., McNeish I.A., Scott C.L., Cameron T., Maloney L., Isaacson J., Goble S., Grace C., Harding T.C., Raponi M., Sun J., Lin K.K., Giordano H., Ledermann J.A.; ARIEL3 investigators. Rucaparib maintenance treatment for recurrent ovarian carcinoma after response to platinum therapy (ARIEL3): a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trial. Lancet. 2017; 390(10106): 1949–61. doi:10.1016/S0140-6736(17)32440-6. Erratum in: Lancet. 2017; 390(10106): 1948.; Essel K.G., Behbakht K., Lai T., Hand L., Evans E., Dvorak J., Ding K., Konecny G., Moore K.N. PARPi after PARPi in epithelial ovarian cancer. Gynecol Oncol Rep. 2021; 35: 100699. doi:10.1016/j.gore.2021.100699.; Pujade-Lauraine E., Ledermann J.A., Selle F., Gebski V., Penson R.T., Oza A.M., Korach J., Huzarski T., Poveda A., Pignata S., Friedlander M., Colombo N., Harter P., Fujiwara K., Ray-Coquard I., Banerjee S., Liu J., Lowe E.S., Bloomfield R., Pautier P.; SOLO2/ENGOT-Ov21 investigators. Olaparib tablets as maintenance therapy in patients with platinum-sensitive, relapsed ovarian cancer and a BRCA1/2 mutation (SOLO2/ENGOT-Ov21): a double-blind, randomised, placebo-controlled, phase 3 trial. Lancet Oncol. 2017; 18(9): 1274–84. doi:10.1016/S1470-2045(17)30469-2.; Pujade-Lauraine E., Selle F., Scambia G., Asselain B., Marme F., Lindemann K., Colombo N., Madry R., Glasspool R.M., Dubot C., Oaknin A., Zamagni C., Heitz F., Gladieff L., Rubio-Perez M.J., Scollo P., Blakeley C., Shaw B., Ray-Coquard I.L., Redondo A. Maintenance olaparib rechallenge in patients (pts) with ovarian carcinoma (OC) previously treated with a PARP inhibitor (PARPi): phase IIIb OReO/ENGOT Ov-38 trial. Annals of Oncology. 2021; 32: 1308–9. doi:10.1016/j.annonc.2021.08.2110.; McMullen M., Karakasis K., Madariaga A., Oza A.M. Overcoming Platinum and PARP-Inhibitor Resistance in Ovarian Cancer. Cancers (Basel). 2020; 12(6): 1607. doi:10.3390/cancers12061607.; Chiappa M., Guffanti F., Bertoni F., Colombo I., Damia G. Overcoming PARPi resistance: Preclinical and clinical evidence in ovarian cancer. Drug Resist Updat. 2021; 55: 100744. doi:10.1016/j.drup.2021.100744.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2240Test

الإتاحة: https://doi.org/10.21294/1814-4861-2022-21-4-156-164Test
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2022-21-4Test
https://doi.org/10.1016/j.cancergencyto.2008.06.012Test
https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2011.01.020Test
https://doi.org/10.1002/cncr.21536Test
https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2017.01.030Test
https://doi.org/10.1200/JCO.2011.39.8545.2012Test
https://doi.org/10.1136/jmedgenet-2016-103902Test
https://doi.org/10.1001/jama.2011.1456Test
https://doi.org/10.1001/jama.2012.20Test

المؤلفون: M. A. Rakina, E. O. Kazakova, T. S. Sudaskikh, N. V. Bezgodova, A. B. Villert, L. A. Kolomiets, I. V. Larionova, М. А. Ракина, Е. О. Казакова, Т. С. Сударских, Н. В. Безгодова, А. Б. Виллерт, Л. А. Коломиец, И. В. Ларионова

المساهمون: The study was supported by the Russian Science Foundation under research project №21-75-10021 at the Laboratory of Translational Molecular and Cellular Biomedicine of the Tomsk State University and the Oncology Research Institute of the Tomsk National Medical Research Center, Работа выполнена при финансовой поддержке РНФ в рамках научного проекта № 21-75-10021 на базе лаборатории трансляционной молекулярной и клеточной биомедицины ТГУ и НИИ онкологии Томского НИМЦ.

المصدر: Siberian journal of oncology; Том 21, № 2 (2022); 45-54 ; Сибирский онкологический журнал; Том 21, № 2 (2022); 45-54 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2022-21-2

مصطلحات موضوعية: скавенджер-рецепторы, tumor-associated macrophages, foam-like cells, receptors, scavenger, опухолеассоциированные макрофаги, клетки с пенистой цитоплазмой

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2083/969Test; Momenimovahed Z., Tiznobaik A., Taheri S., Salehiniya H. Ovarian cancer in the world: epidemiology and risk factors. Int J Womens Health. 2019; 11: 287–99. doi:10.2147/IJWH.S197604.; Виллерт А.Б., Коломиец Л.А., Юнусова Н.В., Иванова А.А. Асцит как предмет исследований при раке яичников. Сибирский онкологический журнал. 2019; 18(1): 116–23. doi:10.21294/1814-4861-2019-18-1-116-123.; Sung H., Ferlay J., Siegel R.L., Laversanne M., Soerjomataram I., Jemal A., Bray F. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries. CA Cancer J Clin. 2021; 71(3): 209–49. doi:10.3322/caac.21660.; Спиридонова Н.В., Демура А.А., Щукин В.Ю. Оценка сопутствующей гинекологической патологии в группе пациенток репродуктивного возраста с опухолями и опухолевидными образованиями яичников. Медицинский алфавит. 2020; 16: 10–4. doi:10.33667/2078-5631-2020-16-10-14.; Вяткина Н.В., Фролова И.Г., Коломиец Л.А., Молчанов С.В., Виллерт А.Б. Возможности комплексного ультразвукового исследования в дооперационном стадировании диссеминированного рака яичников. Сибирский онкологический журнал. 2016; 15(4): 26–32. doi:10.21294/1814-4861-2016-15-4-26-32.; Yin M., Shen J., Yu S., Fei J., Zhu X., Zhao J., Zhai L., Sadhukhan A., Zhou J. Tumor-Associated Macrophages (TAMs): A Critical Activator In Ovarian Cancer Metastasis. Onco Targets Ther. 2019; 12: 8687–99. doi:10.2147/OTT.S216355.; Cortez A.J., Tudrej P., Kujawa K.A., Lisowska K.M. Advances in ovarian cancer therapy. Cancer Chemother Pharmacol. 2018; 81(1): 17–38. doi:10.1007/s00280-017-3501-8.; Ефимова О.А., Сафонова М.А. Эпидемиология рака яичников на ранних стадиях. Acta Medica Eurasica. 2018; 4: 9–18.; Brand A.H., DiSilvestro P.A., Sehouli J., Berek J.S. Cytoreductive surgery for ovarian cancer: quality assessment. Ann Oncol. 2017; 28(8): 25–9. doi:10.1093/annonc/mdx448.; Henderson J.T., Webber E.M., Sawaya G.F. Screening for Ovarian Cancer: Updated Evidence Report and Systematic Review for the US Preventive Services Task Force. JAMA. 2018; 319(6): 595–606. doi:10.1001/jama.2017.21421.; Larionova I., Tuguzbaeva G., Ponomaryova A., Stakheyeva M., Cherdyntseva N., Pavlov V., Choinzonov E., Kzhyshkowska J. Tumor-Associated Macrophages in Human Breast, Colorectal, Lung, Ovarian and Prostate Cancers. Front Oncol. 2020; 10. doi:10.3389/fonc.2020.566511.; Zhang M., He Y., Sun X., Li Q., Wang W., Zhao A., Di W. A high M1/M2 ratio of tumor-associated macrophages is associated with extended survival in ovarian cancer patients. J Ovarian Res. 2014; 7: 19. doi:10.1186/1757-2215-7-19.; Yuan X., Zhang J., Li D., Mao Y., Mo F., Du W., Ma X. Prognostic significance of tumor-associated macrophages in ovarian cancer: A meta-analysis. Gynecol Oncol. 2017; 147(1): 181–7. doi:10.1016/j.ygyno.2017.07.007.; Allavena P., Mantovani A. Immunology in the clinic review series; focus on cancer: tumour-associated macrophages: undisputed stars of the inflammatory tumour microenvironment. Clin Exp Immunol. 2012; 167(2): 195–205. doi:10.1111/j.1365-2249.2011.04515.x.; Cassetta L., Fragkogianni S., Sims A.H., Swierczak A., Forrester L.M., Zhang H., Soong D.Y.H., Cotechini T., Anur P., Lin E.Y., Fidanza A., Lopez-Yrigoyen M., Millar M.R., Urman A., Ai Z., Spellman P.T., Hwang E.S., Dixon J.M., Wiechmann L., Coussens L.M., Smith H.O., Pollard J.W. Human Tumor-Associated Macrophage and Monocyte Transcriptional Landscapes Reveal Cancer-Specific Reprogramming, Biomarkers, and Therapeutic Targets. Cancer Cell. 2019; 35(4): 588–602. doi:10.1016/j.ccell.2019.02.009.; Malfitano A.M., Pisanti S., Napolitano F., Di Somma S., Martinelli R., Portella G. Tumor-Associated Macrophage Status in Cancer Treatment. Cancers (Basel). 2020; 12(7): 1987. doi:10.3390/cancers12071987.; Eisinger S., Sarhan D., Boura V.F., Ibarlucea-Benitez I., Tyystjärvi S., Oliynyk G., Arsenian-Henriksson M., Lane D., Wikström S.L., Kiessling R., Virgilio T., Gonzalez S.F., Kaczynska D., Kanatani S., Daskalaki E., Wheelock C.E., Sedimbi S., Chambers B.J., Ravetch J.V., Karlsson M.C.I. Targeting a scavenger receptor on tumor-associated macrophages activates tumor cell killing by natural killer cells. Proc Natl Acad Sci USA. 2020; 117(50): 32005–16. doi:10.1073/pnas.2015343117.; Guerrini V., Gennaro M.L. Foam Cells: One Size Doesn’t Fit All. Trends Immunol. 2019; 40(12): 1163–79. doi:10.1016/j.it.2019.10.002.; Lee-Rueckert M., Lappalainen J., Kovanen P.T., Escola-Gil J.C. Lipid-Laden Macrophages and Inflammation in Atherosclerosis and Cancer: An Integrative View. Front Cardiovasc Med. 2022; 9. doi:10.3389/fcvm.2022.777822.; Donadon M., Torzilli G., Cortese N., Soldani C., Di Tommaso L., Franceschini B., Carriero R., Barbagallo M., Rigamonti A., Anselmo A., Colombo F.S., Maggi G., Lleo A., Cibella J., Peano C., Kunderfranco P., Roncalli M., Mantovani A., Marchesi F. Macrophage morphology correlates with single-cell diversity and prognosis in colorectal liver metastasis. J Exp Med. 2020; 217(11). doi:10.1084/jem.20191847.; Krawczyk K.M., Nilsson H., Allaoui R., Lindgren D., Arvidsson M., Leandersson K., Johansson M.E. Papillary renal cell carcinoma-derived chemerin, IL-8, and CXCL16 promote monocyte recruitment and differentiation into foam-cell macrophages. Lab Invest. 2017; 97(11): 1296–305. doi:10.1038/labinvest.2017.78.; Ouimet M., Koster S., Sakowski E., Ramkhelawon B., van Solingen C., Oldebeken S., Karunakaran D., Portal-Celhay C., Sheedy F.J., Ray T.D., Cecchini K., Zamore P.D., Rayner K.J., Marcel Y.L., Philips J.A., Moore K.J. Mycobacterium tuberculosis induces the miR-33 locus to reprogram au tophagy and host lipid metabolism. Nat Immunol. 2016; 17(6): 677–86. doi:10.1038/ni.3434.; Nolan S.J., Romano J.D., Coppens I. Host lipid droplets: An important source of lipids salvaged by the intracellular parasite Toxoplasma gondii. PLoS Pathog. 2017; 13(6). doi:10.1371/journal.ppat.1006362.; Politz O., Gratchev A., McCourt P.A., Schledzewski K., Guillot P., Johansson S., Svineng G., Franke P., Kannicht C., Kzhyshkowska J., Longati P., Velten F.W., Johansson S., Goerdt S. Stabilin-1 and -2 constitute a novel family of fasciclin-like hyaluronan receptor homologues. Biochem J. 2002; 362(1): 155–64. doi:10.1042/0264-6021:3620155.; Taban Q., Mumtaz P.T., Masoodi K.Z., Haq E., Ahmad S.M. Scavenger receptors in host defense: from functional aspects to mode of action. Cell Commun Signal. 2022; 20(1): 2. doi:10.1186/s12964-021-00812-0.; Madsen D.H., Jürgensen H.J., Siersbæk M.S., Kuczek D.E., Grey Cloud L., Liu S., Behrendt N., Grøntved L., Weigert R., Bugge T.H. Tumor-Associated Macrophages Derived from Circulating Inflammatory Monocytes Degrade Collagen through Cellular Uptake. Cell Rep. 2017; 21(13): 3662–71. doi:10.1016/j.celrep.2017.12.011.; Corn K.C., Windham M.A., Rafat M. Lipids in the tumor microenvironment: From cancer progression to treatment. Prog Lipid Res. 2020; 80. doi:10.1016/j.plipres.2020.101055.; Wu H., Han Y., Rodriguez Sillke Y., Deng H., Siddiqui S., Treese C., Schmidt F., Friedrich M., Keye J., Wan J., Qin Y., Kühl A.A., Qin Z., Siegmund B., Glauben R. Lipid droplet-dependent fatty acid metabolism controls the immune suppressive phenotype of tumor-associated macrophages. EMBO Mol Med. 2019; 11(11). doi:10.15252/emmm.201910698.; Shimizu R., Tanaka K., Oikawa Y., Tomioka H., Kayamori K., Ikeda T., Yoshioka T., Ebihara A., Harada H. Epithelioid cell granuloma with caseating necrosis possibly caused by periapical periodontitis: a case report. J Med Case Rep. 2018; 12(1): 365. doi:10.1186/s13256-018-1891-9.; Gordon S. Phagocytosis: An Immunobiologic Process. Immunity. 2016; 44(3): 463–75. doi:10.1016/j.immuni.2016.02.026.; Huff M.W., Daugherty A., Lu H. Chapter 18 – Atherosclerosis. Biochemistry of Lipids, Lipoproteins and Membranes (Sixth Edition). Elsevier. 2016. P. 519–48. doi:10.1016/B978-0-444-63438-2.00018-3.; Zhang L., Han L., He J., Lv J., Pan R., Lv T. A high serum-free fatty acid level is associated with cancer. J Cancer Res Clin Oncol. 2020; 146(3): 705–10. doi:10.1007/s00432-019-03095-8.; Su P., Wang Q., Bi E., Ma X., Liu L., Yang M., Qian J., Yi Q. Enhanced Lipid Accumulation and Metabolism Are Required for the Differentiation and Activation of Tumor-Associated Macrophages. Cancer Res. 2020; 80(7): 1438–50. doi:10.1158/0008-5472.CAN-19-2994.; Liu-Jarin X., Stoopler M.B., Raftopoulos H., Ginsburg M., Gorenstein L., Borczuk A.C. Histologic assessment of non-small cell lung carcinoma after neoadjuvant therapy. Mod Pathol. 2003; 16(11): 1102–8. doi:10.1097/01.MP.0000096041.13859.AB.; Lo Russo G., Moro M., Sommariva M., Cancila V., Boeri M., Centonze G., Ferro S., Ganzinelli M., Gasparini P., Huber V., Milione M., Porcu L., Proto C., Pruneri G., Signorelli D., Sangaletti S., Sfondrini L., Storti C., Tassi E., Bardelli A., Marsoni S., Torri V., Tripodo C., Colombo M.P., Anichini A., Rivoltini L., Balsari A., Sozzi G., Garassino M.C. Antibody-Fc/FcR Interaction on Macrophages as a Mechanism for Hyperprogressive Disease in Non-small Cell Lung Cancer Subsequent to PD-1/PD-L1 Blockade. Clin Cancer Res. 2019; 25(3): 989–99. doi:10.1158/1078-0432.CCR-18-1390.; Feinberg H., Jégouzo S.A.F., Lasanajak Y., Smith D.F., Drickamer K., Weis W.I., Taylor M.E. Structural analysis of carbohydrate binding by the macrophage mannose receptor CD206. J Biol Chem. 2021; 296. doi:10.1016/j.jbc.2021.100368.; PrabhuDas M.R., Baldwin C.L., Bollyky P.L., Bowdish D.M.E., Drickamer K., Febbraio M., Herz J., Kobzik L., Krieger M., Loike J., McVicker B., Means T.K., Moestrup S.K., Post S.R., Sawamura T., Silverstein S., Speth R.C., Telfer J.C., Thiele G.M., Wang X.Y., Wright S.D., El Khoury J. A Consensus Definitive Classification of Scavenger Receptors and Their Roles in Health and Disease. J Immunol. 2017; 198(10): 3775–89. doi:10.4049/jimmunol.1700373.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2083Test

الإتاحة: https://doi.org/10.21294/1814-4861-2022-21-2-45-54Test
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2022-21-2Test
https://doi.org/10.2147/IJWH.S197604Test
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2019-18-1-116-123Test
https://doi.org/10.3322/caac.21660Test
https://doi.org/10.33667/2078-5631-2020-16-10-14Test
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2016-15-4-26-32Test
https://doi.org/10.2147/OTT.S216355Test
https://doi.org/10.1007/s00280-017-3501-8Test
https://doi.org/10.1093/annonc/mdx448Test

المؤلفون: O. N. Churuksaeva, L. A. Kolomiets, A. B. Villert, О. Н. Чуруксаева, Л. А. Коломиец, А. Б. Виллерт

المصدر: Siberian journal of oncology; Том 20, № 1 (2021); 162-168 ; Сибирский онкологический журнал; Том 20, № 1 (2021); 162-168 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2021-20-1

مصطلحات موضوعية: пембролизумаб, microsatellite instability, MSI, disruption in the repair system, MMR, chemotherapy, lenvatinib, pembrolizumab, микросателлитная нестабильность, нарушение в системе репарации, химиотерапия, ленватиниб

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1705/840Test; Waki K., Yokomizo K., Kawano K., Tsuda N., Komatsu N., Yamada A. Integrity of plasma cell-free DNA as a prognostic factor for vaccine therapy in patients with endometrial cancer. Mol Clin Oncol. 2021 Feb; 14(2): 29. doi:10.3892/mco.2020.2191.; Bray F., Ferlay J., Soerjomataram I., Siegel R.L., Torre L.A., Jemal A. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2018 Nov; 68(6): 394–424. doi:10.3322/caac.21492.; de Haydu C., Black J.D., Schwab C.L., English D.P., Santin A.D. An update on the current pharmacotherapy for endometrial cancer. Expert Opin Pharmacother. 2016; 17(4): 489–99. doi:10.1517/14656566.2016.1127351.; Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2018. CA Cancer J Clin. 2018 Jan; 68(1): 7–30. doi:10.3322/caac.21442.; Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2019. CA Cancer J Clin. 2019 Jan; 69(1): 7–34. doi:10.3322/caac.21551.; Cancer Genome Atlas Research Network, Kandoth C., Schultz N., Cherniack A.D., Akbani R., Liu Y., Shen H., Robertson A.G., Pashtan I., Shen R., Benz C.C., Yau C., Laird P.W., Ding L., Zhang W., Mills G.B., Kucherlapati R., Mardis E.R., Levine D.A. Integrated genomic characterization of endometrial carcinoma. Nature. 2013 May; 497(7447): 67–73. doi:10.1038/nature12113.; Трякин А.А., Федянин М.Ю., Цуканов А.С., Шелыгин Ю.А., Покатаев И.А., Игнатова Е.О., Хакимова Г.Г., Фролова М.А., Тюляндин С.А. Микросателлитная нестабильность как уникальная характеристика опухолей и предиктор эффективности иммунотерапии. Злокачественные опухоли. 2019; 9(4): 59–69. doi:10.18027/2224-5057-2019-9-4-59-69.; Hause R.J., Pritchard C.C., Shendure J., Salipante S.J. Classification and characterization of microsatellite instability across 18 cancer types. Nat Med. 2016 Nov; 22(11): 1342–1350. doi:10.1038/nm.4191.; Boland C.R., Goel A. Microsatellite instability in colorectal cancer. Gastroenterology. 2010; 138(6): 2073–87. doi:10.1053/j.gastro.2009.12.064.; Ta R.M., Hecht J.L., Lin D.I. Discordant loss of mismatch repair proteins in advanced endometrial endometrioid carcinoma compared to paired primary uterine tumors. Gynecol Oncol. 2018 Dec; 151(3): 401–406. doi:10.1016/j.ygyno.2018.10.012.; Makker V., Taylor M.H., Aghajanian C., Oaknin A., Mier J., Cohn A.L., Romeo M., Bratos R., Brose M.S., DiSimone C., Messing M., Stepan D.E., Dutcus C.E., Wu J., Schmidt E.V., Orlowski R., Sachdev P., Shumaker R., Casado Herraez A. Lenvatinib Plus Pembrolizumab in Patients With Advanced Endometrial Cancer. J Clin Oncol. 2020 Sep; 38(26): 2981–92. doi:10.1200/JCO.19.02627.; Тюляндин С.А. Новая эффективная комбинация для лечения рака эндометрия [Интернет]. URL: https://rosoncoweb.ru/news/oncology/2020/04/20-1Test (дата обращения: 01.02.2020).; Rossi E.C., Kowalski L.D., Scalici J., Cantrell L., Schuler K., Hanna R.K., Method M., Ade M., Ivanova A., Boggess J.F. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. Lancet Oncol. 2017; 18(3): 384–92. doi:10.1016/S1470-2045(17)30068-2.; Holloway R.W., Gupta S., Stavitzski N.M., Zhu X., Takimoto E.L. Gubbi A., Bigsby G.E., Brudie L.A., Kendrick J.E., Ahmad S. Sentinel lymph node mapping with staging lymphadenectomy for patients with endometrial cancer increases the detection of metastasis. Gynecol Oncol. 2016; 141(2): 206–10. doi:10.1016/j.ygyno.2016.02.018.; Wang L., Liu F. Meta-analysis of laparoscopy sentinel lymph node mapping in endometrial cancer. Arch Gynecol Obstet. 2018 Sep; 298(3): 505–510. doi:10.1007/s00404-018-4845-y.; Очиров М.О., Коломиец Л.А., Чернов В.И., Синилкин И.Г., Чернышова А.Л., Виллерт А.Б., Молчанов С.В., Чуруксаева О.Н., Кишкина А.Ю. Первый опыт клинического применения лапароскопического гамма-зонда для интраоперационной визуализации «сторожевых» лимфатических узлов при гинекологическом раке. Сибирский онкологический журнал. 2018; 17(5): 45–51.; Румянцев П.О., Романов И.С., Мудунов А.М., Шаварова Е.К., Слащук К.Ю., Волкова М.И., Исаев П.А., Шатохина Е.А. Бородавина Е.В. персонализированная терапия ленватинибом (Ленвима®). Методическое пособие для врачей. 14 с.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1705Test

الإتاحة: https://doi.org/10.21294/1814-4861-2021-20-1-162-16810.21294/1814-4861-2021-20-110.3892/mco.2020.219110.3322/caac.2149210.1517/14656566.2016.112735110.3322/caac.2144210.3322/caac.2155110.1038/nature1211310.18027/2224-5057-2019-9-4-59-6910.1038/nm.419110.1053/j.gastro.2009.12.06410.1016/j.ygyno.2018.10.01210.1200/JCO.19.0262710.1016/S1470-2045Test(17)30068-210.1016/j.ygyno.2016.02.01810.1007/s00404-018-4845-y
https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1705Test

المؤلفون: M. O. Ochirov, L. A. Kolomiets, V. I. Chernov, I. G. Sinilkin, A. L. Chernyshova, A. B. Villert, S. V. Molchanov, O. N. Churuksaeva, A. Yu. Kishkina, М. О. Очиров, Л. А. Коломиец, В. И. Чернов, И. Г. Синилкин, А. Л. Чернышова, А. Б. Виллерт, С. В. Молчанов, О. Н. Чуруксаева, А. Ю. Кишкина

المصدر: Siberian journal of oncology; Том 17, № 5 (2018); 45-51 ; Сибирский онкологический журнал; Том 17, № 5 (2018); 45-51 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2018-17-5

مصطلحات موضوعية: лапароскопический гамма-зонд, cervical cancer, sentinel lymph node, radioactive lymphotropic colloid, laparoscopic gamma-probe, рак шейки матки, «сторожевые» лимфатические узлы, радиофармпрепарат

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/857/568Test; NCCN guidelines. 2017 [Internet]. URL: https://www.nccn.org/professionals/physician_gls/default.aspxTest (cited 01.10.2018).; Чернов В.И., Синилкин И.Г., Ширяев С.В., Лишманова Ю.Б., Чернова В.И., Казначеева А.О., Усов В.Ю. Радионуклидное выявление сторожевых лимфатических узлов. Национальное руководство по радионуклидной диагностике. Томск, STT. 2010. 336.; Colombo N., Preti E., Landoni F., Carinelli S., Colombo A., Marini C., Sessa C.; ESMO Guidelines Working Group. Endometrial cancer: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 2013 Oct; 24 Suppl 6: vi33–8. doi:10.1093/annonc/mdt353.; Papadia A., Gasparri M.L., Buda A., Mueller M.D. Sentinel lymph node mapping in endometrial cancer: comparison of fluorescence dye with traditional radiocolloid and blue. J Cancer Res Clin Oncol. 2017 Oct; 143 (10): 2039–2048. doi:10.1007/s00432-017-2501-8.; Khoury-Collado F., St Clair C., Abu-Rustum N.R. Sentinel Lymph Node Mapping in Endometrial Cancer: An Update. Oncologist. 2016 Apr; 21 (4): 461–6. doi:10.1634/theoncologist.2015-0473.; Ehrisman J., Secord A.A., Berchuck A., Lee P.S., Di Santo N., LopezAcevedo M., Broadwater G., Valea F.A., Havrilesky L.J. Performance of sentinel lymph node biopsy in high-risk endometrial cancer. Gynecol Oncol Rep. 2016; 17: 69–71. doi:10.1016/j.gore.2016.04.002.; Трифанов Ю.Н., Гавриш Ю.Е., Ибрагимов З.Н., Гусейнов К.Д., Микая Н.А., Ульрих Е.А., Урманчеева А.Ф., Берлев И.В. Роль лапароскопии в лечении рака эндометрия у женщин старше 70 лет. Опухоли женской репродуктивной системы. 2018; 14 (1): 78–85.; Buda A., Elisei F., Arosio M., Dolci C., Signorelli M., Perego P., Giuliani D., Recalcati D., Cattoretti G., Milani R., Messa C. Integration of hybrid single-photon emission computed tomography/computed tomography in the preoperative assessment of sentinel node in patients with cervical and endometrial cancer: our experience and literature review. Int J Gynecol Cancer. 2012 Jun; 22 (5): 830–5. doi:10.1097/IGC.0b013e318253496f.; Collarino A., Vidal-Sicart S., Perotti G., Valdés Olmos R.A. The sentinel node approach in gynaecological malignancies. Clin Transl Imag. 2016; 4 (5): 411– 420. doi:10.1007/s40336-016-0187-6.; Giammarile F., Bozkurt M.F., Cibula D., Pahisa J., Oyen W.J., Paredes P., Olmos R.V., Sicart S.V. The EANM clinical and technical guidelines for lymphoscintigraphy and sentinel node localization ingynaecological cancers. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2014 Jul; 41 (7): 1463–77. doi:10.1007/s00259-014-2732-8.; Nieweg O.E. The sentinel lymph node concept in oncology surgery. In: Mariani G., Manca G., Orsini P., Vidal-Sicar t S., Valdés Olmos R. Atlas of lymphoscintigraphy and sentinel node mapping. Springer Science & Business Media, 2012. 87–93.; Берлев И.В., Ульрих Е.А., Сапаров А.Б., Некрасова Е.А., Микая Н.А., Урманчеева А.Ф., Цыпурдеева А.А. Лапароскопическая гистерэктомия при раке эндометрия у пациенток с ожирением. Журнал акушерства и женских болезней. 2014; 63 (6): 21–31.; Petropoulou T., Kapoula A., Mastoraki A., Politi A., SpanidouKarvouni E., Psychogios I., Vassiliou I., Arkadopoulos N. Imprint cytology versus frozen section analysis for intraoperative assessment of sentinel lymph node in breast cancer. Breast Cancer (Dove Med Press). 2017 May 5; 9: 325–330. doi:10.2147/BCTT.S130987.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/857Test

الإتاحة: https://doi.org/10.21294/1814-4861-2018-17-5-45-5110.21294/1814-4861-2018-17-510.1093/annonc/mdt35310.1007/s00432-017-2501-810.1634/theoncologist.2015-047310.1016/j.gore.2016.04.00210.1097/IGC.0b013e318253496f10.1007/s40336-016-0187-610.1007/s00259-014-2732-810.2147/BCTT.S130987Test
https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/857Test

المؤلفون: Л. А. Коломиец, А. Л. Чернышова, О. Н. Чуруксаева, А. Б. Виллерт, С. В. Молчанов

المصدر: Malignant tumours; № 3s1 (2017); 66-72 ; Злокачественные опухоли; № 3s1 (2017); 66-72 ; 2587-6813 ; 2224-5057

مصطلحات موضوعية: мутации генов BRCA1,2, рак яичников, сторожевые лимфатические узлы, факторы прогноза, Ki-67, COX-2, p16ink4a, лапароскопия, индекс PIV

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/383/329Test; Cостояние онкологической помощи населению России в 2016 году. Под. ред. А. Д. Каприна, В. В. Старинского, Г. В. Петровой. – М.: МНИОИ им. П. А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России, 2017. – 236с.; Wuntakal R, Papadopoulos AJ, Montalto SA, Perovic M, Coutts M, Devaja O. Int J. Location of Sentinel Lymph Node in Cervical Carcinoma and Factors Associated With Unilateral Detection. Gynecol Cancer. 2015 Nov;25 (9):1663-8.; Ungar, L. Surgical treatment of lymph node metastases in stage IB cervical cancer. The laterally extended parametrectomy (LEP) procedure: experience with a 5 year follow-up / L. Ungar, L. Palfalvi, L. Tarnai et al. // Gynecol. Oncol. – 2011. – Vol. 123, № 2. – P. 337–41.; Zhang, D. A new method of surgical margin assuring for abdominal radical trachelectomy in frozen section / D. Zhang, H. Ge, J. Li et al.// J. of Cancer. – 2015. – Vol. 51, № 6. – P. 734–41.; Zada, A. Meta-analysis of sentinel lymph node biopsy in breast cancer using the magnetic technique / A. Zada, M. C. L. Peek, M. Ahmed et al. // Br J Surg. – 2016. – Vol. 103, № 11. – P. 1409–19.; Варламова Н. В., Скуридин В. С., Нестеров Е. А., Чернов В. И., Тицкая А. А. Исследование острой токсичности нового радиофармацевтического препарата «Наноколлоид, 99mTc-Al2O3» для диагностики в онкологии. // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2015. Т. 78. № 6. С. 26–29.; Карапетян В. Л., Степанова Е. В., Барышников А. Ю., Никогосян С. О., Кузнецов В. В. Молекулярно-биологические факторы прогноза рака яичников начальных стадий // Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН, т. 22, № 1, 2011 – С. 37–40.; Samir Raghad, Asplund Anna, Tot Tibor, Pekar Gyula, Hellberg Dan Tissue tumor marker expression in smokers, including serum cotinine concentrations, in women with cervical intraepithelial neoplasia or normal squamous cervical epithelium // Am J Obstet Gynecol 2010; 202: 579. e1–7. doi:10.1016 / j. ajog. 2009.11.034.; Винокуров В. Л., Пожарисский К. М., Жаринов Г. М., Гаспарян Н. А., Самсонова Е. А., Кузнецова М. Е., Болдарян Н. А. Иммуногистохимические маркеры в качестве прогностических критериев в онкогинекологии // Вопросы онкологии. – 2008. – № 4. – С. 463–470.; Кузнецова М. Е. Иммуногистохимическая оценка пролиферативной активности и репаративных способностей плоскоклеточного рака шейки матки как показателей эффективности лучевой терапии: диссертация… кандидата медицинских наук Санкт-Петербург, 2009. – 84 с.; Cambruzzi E., Zettler C. G., Alexandre C. O. Expression of Ki-67 and squamous intraepithelial lesions are related with HPV in endocervical adenocarcinoma // P Cambruzzi E. athology Oncology Res. 2005. V. 11. P. 114–120.; Carriho C., Gouveia P., Cantel M. [Et al.] Characterization of human papillomavirus infection, p53 and ki-67 expression in cervix cancer of Mozambican women // Pathol. Res. Pract. – 2003. – Vol. 199. – P. 303–311.; Naucler P., Ryd W., Tornberg S. et al. Efficacy of HPV DNA testing with cytology triage and / or repeat HPV DNA testing in primary cervical cancer screening. J Natl Cancer Inst 2009; 101 (2):88-99. doi:10.1093 / jnci / djn444. Epub 2009 Jan 13.; Ozgul N, CilA P, Bozdayi G, Usubutun A, Bulbul D, Rota S, Kose MF, Biri A, Haberal A Staining characteristics of p16INK4a: is there a correlation with lesion grade or high-risk human papillomavirus positivity? / J Obstet Gynaecol Res. 2008 Oct;34 (5):865–71.; Mitchell A, Newton JM, Brite K, Einspahr J, Ellis M, Davis J, et al. Cyclooxygenase 2 expression in cervical intraepithelial neoplasia and vulvar cancer. J Low Genit Tract Dis 2007; 11 (2):80–5.; Kiviat N. B., Hawes S. E., Feng Q. Screening for cervical cancer in the era of the HPV vaccine – the urgent need for both new screening guidelines and new biomarkers. J Natl Cancer Inst 2008; 100:290-1. doi:10.1093 / jnci / djn038. Epub 2008 Feb 26.; Dursun P, Yuce K, Usubutun A, Ayhan A. Cyclooxygenase-2 expression in cervical intraepithelial neoplasia III and squamous cell cervical carcinoma, and its correlation with clinicopathologic variables. Int J Gynecol Cancer 2007; 17 (1):164–73.; Gadducci A., Guerrieri ME, Greco C. Tissue biomarkers as prognostic variables of cervical cancer Crit Rev Oncol Hematol 2013 May;86 (2):104-29. doi:10.1016 / j. critrevonc. 2012.09.003. Epub 2012 Sep 30.; Kuo KT, Chang HC, Hsiao CH et al. Increased ki-67 proliferative index and absence of p16INK4a in CIN-HPV related pathogenic pathways different from cervical squamous intraepithelial lesion//British J Ophthalmol – 2006 – Vol. 90 – p. 894–899.; Sales KJ, Katz AA, Howard B, Soeters RP, Millar RP, Jabbour H. Cyclooxygenase-1 is up-regulated in cervical carcinomas: autocrine / paracrine regulation of Cyclooxygenase-2, prostoglandine receptors, angiogenic factors by Cyclooxygenase-1 // Cancer Res. – 2002; 62: 424.; Hammes Luciano S., Tekmal Rajeshwar Rao, Naud Paulo, Edelweiss Maria Isabel, KirmaNameer, Valente Philip T., Syrjanen Kari J., Cunha-Filho Joao Sabino Up-regulation of VEGF, c-fms and COX-2 expression correlates with severity of cervical cancer precursor (CIN) lesions and invasive disease// Gynecologic Oncology 110 (2008) 445-451. doi:10.1016 / j. ygyno. 2008.04.038. Epub 2008 Jun 20.; Bristow R. E., Tomacruz R. S., Armstrong D. K., Trimble E. L., Montz F. J. Survival effect of maximal cytoreductive surgery for advanced ovarian carcinoma during the platinum era: a meta-analysis. Journal of Clinical Oncology. 2002. Vol. 20. P. 1248-59.; Dai-yuan M., Bang-xian T., Xian-fu L. Ye-qin Z., Hong-Wei C. A meta-analysis: neoadjuvant chemotherapy versus primary surgery in ovarian carcinoma FIGO stageIII and IV. World Journal of Surgical Oncology. 2013. https://doi.orgTest / 10.1186 / 1477-7819-11-267. doi:10.1186 / 1477-7819-11-267.; Fagotti A., Ferrandina G., Fanfani F. et al. A laparoscopy-based score to predict surgical outcome in patients with advanced ovarian carcinoma: a pilot study. Annals of Surgical Oncology. 2006. Vol. 13. P. 1156–61.; Ozols R. F., Bundy B. N., Greer B. E., Fowler J. M., Clarke-Pearson D., Burger R. A., Mannel R. S., DeGeest K., Hartenbach E. M., Baergen R. Phase III Trial of Carboplatin and Paclitaxel Compared With Cisplatin and Paclitaxel in Patients With Optimally Resected Stage III Ovarian Cancer: A Gynecologic Oncology Group Study // Journal of Clinical Oncology 2003 21:17, 3194–3200.; Vasey P. A. Resistance to chemotherapy in advanced ovarian cancer: mechanisms and current strategies // Br J Cancer. 2003 Dec; 89 (Suppl 3): S23 – S28.; Bolton et al. Association between BRCA1 and BRCA2 mutations and survival in women with invasive epithelial ovarian cancer // JAMA, 2012;307 (4): 382-39. doi:10.1001 / jama. 2012.20.; Easton D. F., Ford D., Bishop D. T. Breast and ovarian cancer incidence in BRCA1-mutation carriers. Breast Cancer Linkage Consortium // Am J Hum Genet. 1995 Jan;56 (1):265-71.; Robles-diaz L., Goldfrank D. J, Kauff N. D, Robson M., Offit K. Hereditary ovarian cancer in Ashkenazi Jews // Familial Cancer, 2004, Volume 3, Number 3-4, P. 259.; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/383Test

الإتاحة: https://doi.org/10.18027/2224-5057-2017-3s1-66-72Test
https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/383Test

المؤلفون: A. B. Villert, A. A. Zavyalov, L. A. Kolomiets, E. A. Fesik, V. М. Perelmuter, М. Karaleshishiva, E. G. Grigoryev, N. V. Litvyakov, А. Б. Виллерт, А. А. Завьялов, Л. А. Коломиец, Е. А. Фесик, В. М. Перельмутер, М. Б. Каракешишева, Е. Г. Григорьев, Н. В. Литвяков

المصدر: Siberian journal of oncology; Том 15, № 6 (2016); 79-88 ; Сибирский онкологический журнал; Том 15, № 6 (2016); 79-88 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2016-15-6

مصطلحات موضوعية: вирус папилломы человека, squamous cell sigmoid colon carcinoma, multiple primary tumors, human papillomavirus, плоскоклеточная карцинома толстой кишки, первично-множественные опухоли

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/451/399Test; Ayhan A., Bukulmez O., Genc C., Karamursel B.S., Ayhan A. Mature cystic teratomas of the ovary: case series from one institution over 34 years. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2000 Feb; 88 (2): 153–7. doi:10.1016/S0301–2115(99)00141–4.; Comerci J.T. Jr., Licciardi F., Bergh P.A., Gregori C., Breen J.L. Mature cystic teratoma: a clinicopathologic evaluation of 517 cases and review of the literature. Obstet Gynecol. 1994 Jul; 84 (1): 22–8.; Powell J.R., Haldar K. Squamous cell carcinoma arising in a mature cystic teratoma of the ovary – a case series and review of the literature. Eur Oncol Hematol. 2013; 9 (1): 17–20. doi:10.17925/EOH.2013.09.1.17.; Hurwitz J.L., Fenton A., McCluggage W.G., McKenna S. Squamous cell carcinoma arising in a dermoid cyst of the ovary: a case series. BJOG. 2007; 114: 1283–1287. doi:10.1111/j.1471–0528.2007.01478.x.; Gainford M.C., Tinker A., Carter J., Petru E., Nicklin J., Quinn M., Hammond I., Elit L., Lenhard M., Friedlander M. Malignant transformation within ovarian dermoid cysts: an audit of treatment received and patient outcomes. An Australia New Zealand gynaecological oncology group (AN-ZGOG) and gynaecologic cancer intergroup (GCIG) study. Int J Gynecol Cancer. 2010 Jan; 20 (1): 75–81. doi:10.1111/IGC.0b013e3181c7fccf.; Kikkawa F., Nawa A., Tamakoshi K., Ishikawa H., Kuzuya K., Suganuma N., Hattori S., Furui K., Kawai M., Arii Y. Diagnosis of squamous cell carcinoma arising from mature cystic teratoma of the ovary. Cancer. 1998 Jun 1; 82 (11): 2 249–55. doi:10.4103/0976–7800.145169.; Ford T.C., Timmins P.F. Successful Treatment of Metastatic Squamous Cell Carcinoma of the Ovary Arising Within a Mature Cystic Teratoma. Clin Ovar Cancer. 2011; 4 (1): 44–6.; Shariat-Torbaghan S., Emami-Aleagha M., Sedighi S., Azadbakht F. Keshvari A., Hajarizadeh B., Rosai J. Squamous Cell Carcinoma Arising in an Ovarian Mature Cystic Teratoma: A Case Report. Arch Iran Med. 2009; 12 (2): 186–9.; Zakkouri F.A., Ouaouch S., Boutayeb S., Rimani M., Gamra L., Mrabti H., Errihani H. Squamous cell carcinoma in situ arising in mature cystic teratoma of the ovary: a case report. J. Ovarian Res. 2011; 24 (4): 5. doi:10.1186/1757–2215–4–5.; Park J.Y., Song J.S., Choi G., Kim J.H., Nam J.H. Pure primary squamous cell carcinoma of the ovary: a report of two cases and review of the literature. Int J Gynecol Pathol. 2010 Jul; 29 (4): 328–34. doi:10.1097/PGP.0b013e3181c6d965.; Nishimura Y., Sekine T., Kobayashi T., Amikura K., Sakamoto H., Tanaka Y. Clinicopathological study of rare histological types of colorectal cancer: multi-institutional questionnaire study. J Jpn Soc Coloproctol. 2004; 57: 132–140.; Hackethal A., Brueggmann D., Bohlmann M.K., Franke F.E., Tinneberg H.R., Münstedt K. Squamous-cell carcinoma in mature cystic teratoma of the ovary: systematic review and analysis of published data. Lancet Oncol. 2008 Dec; 9 12):1173–80. doi:10.1016/S1470–2045-(08)70306–1.; Pins M.R., Young R.H., Daly W.J., Scully R.E. Primary squamous cell carcinoma of the ovary. Report of 37 cases. Am J Surg Pathol. 1996 Jul; 20 (7): 823–33.; Писарева Л.Ф., Чойнзонов Е.Л., Гурина Л.И., Одинцова И.Н., Шойхет Я.Н., Лазарев А.Ф., Юдин С.В., Косых Н.Э. Онкоэпидемиологические исследования в регионе Сибири и Дальнего Востока. Дальневосточный медицинский журнал. 2005; 1: 51–55.; Juturi J.V., Francis B., Koontz P.W., Wilkes J.D. Squamous-cell carcinoma of the colon responsive to combination chemotherapy: report of two cases and review of the literature. Dis Colon Rectum. 1999 Jan; 42 (1): 102–9.; Fahim F., Al-Salamah S.M., Alam M.K., Al-Akeely M.H. Squamous cell carcinoma of colon and rectum. Saudi Med J. 2006 Jun; 27(6): 874–7.; Goodfellow P.B., Brown S.R., Hosie K.B., Felley K. Squamous cell carcinoma of the colon in asbestos worker. Eur J Surg Oncol. 1999 Dec; 25 (6): 632–3. doi:10.1053/ejso.1999.0720.; Copur S., Ledakis P., Novinski D., Mleczko K.L., Frankforter S., Bolton M., Fruehling R.M., VanWie E., Norvell M., Muhvic J. Squamous Cell Carcinoma of the Colon with an Elevated Serum Squamous Cell Carcinoma Antigen Responding to Combination Chemotherapy. Clin Colorectal Cancer. 2001 May; 1 (1): 55–8. doi:10.3816/CCC.2001.n.006.; Sameer А.S., Syeed N., Chowdri N.A., Parray F.Q., Siddiqi M.A. Squamous cell carcinoma of rectum presenting in a man: a case report. J Med Case Rep. 2010 Nov 30; 4: 392. doi:10.1186/1752–1947–4–392.; Adair H.M., Trowell J.E. Squamous cell carcinoma arising in a duplication of the small bowel. J Pathol. 1981 Jan; 133 (1): 25–31. doi:10.1002/path.1711330104.; Viamonte M. Primary squamous-cell carcinoma of the small bowel. Report of a case. Dis. Colon. Rectum. 1992; 35 (8): 806–809.; Hayashi I., Katsuda Y., Muto Y., Fujii Y., Morimatsu M. Tubular adenoma with squamous metaplasia of the sigmoid colon: A case report. J Surg Oncol. 1984; 26 (2): 130–134.; Cagir B., Nagy M.W., Topham A., Rakinic J., Fry R.D. Adenosquamous carcinoma of the colon, rectum, and anus: epidemiology, distribution, and survival characteristics. Dis Colon Rectum. 1999 Feb; 42 (2): 258–63.; Masoomi H., Ziogas A., Lin B.S., Barleben A., Mills S., Stamos M.J., Zell J.A. Population–based evaluation of adenosquamous carcinoma of the colon and rectum. Dis Colon Rectum. 2012 May; 55 (5): 509–14. doi:10.1097/DCR.0b013e3182420953.; Shafaghi A., Askari K., Ashoobi M.T., Mansour-Ghanaei F. Adenosqamous carcinoma of the sigmoid colon: a case report and review of literature. Int J Clin Exp Med. 2013 May 22; 6 (5): 390–2.; Frizelle F.A., Hobday K.S., Batts K.P., Nelson H. Adenosqamous and squamous carcinoma of the colon and apper rectum: A clinical and histopathologic study. Dis Colon Rectum. 2001 Mar; 44 (3): 341–6.; Dwivedi R.C., Kazi R., Agrawal N., Chisholm E., St Rose S., Elmiyeh B., Rennie C., Pepper C., Clarke P.M., Kerawala C.J., Rhys–Evans P.H., Harrington K.J., Nutting C.M. Comprehensive review of small bowel metastasis from head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncol. 2010 May; 46 (5): 330–5. doi:10.1016/j.oraloncology.2010.01.013.; Bosch F.X., Lorincz A., Munoz N., Meijer C.J., Shah K.V. The causal relation between human papillomavirus and cervical cancer. J Clin Pathol. 2002 Apr; 55 (4): 244–265.; Dillner J., Lehtinen M., Bjorge T., Luostarinen T., Youngman L., Jellum E., Koskela P., Gislefoss R.E., Hallmans G., Paavonen J., Sapp M., Schiller J.T., Hakulinen T., Thoresen S., Hakama M. Prospective seroepidemiologic study of human papillomavirus infection as a risk factor for invasive cervical cancer. J Natl Cancer Inst. 1997 Sep 3; 89 (17): 1293–9.; Gupta J., Pilotti S., Rilke F., Shah K. Association of human papillomaviruse type 16 with neoplastic lesions of the vulva and other genital sites by in situ hybridization. Am J Pathol. 1987 May; 127 (2): 206–15.; Fields B.N., Knipe D.M., Howley P.M. Fields Virology. 3rd ed. Philadelphia, Pa: Lippincott–Raven Publishers; 1996. Vol. 2. Shah K.V., Howley P.M. Papillomaviruses: 2077–2109.; Zur Hausen H. Papillomaviruses in human cancers. Proc Assoc Am Physicians. 1999 Nov-Dec; 111 (6): 581–7.; Boyle P., Maisonneuve P., Autier P. Update on cancer control in women. Int J Gynaecol Obstet. 2000 Aug; 70 (2): 263–303.; Kaufman R.H., Bornstein J., Gordon A.N., Adam E., Kaplan A.L., Adler–Storthz K. Detection of human papillomavirus DNA in advanced epithelial ovarian carcinoma. Gynecol Oncol. 1987 Jul; 27 (3): 340–9. doi:10.1016/0090–8258(87)90256–3.; Chiang A.J., Chen D.R., Cheng J.T., Chang T.H. Detection of human papillomavirus in squamous cell carcinoma arising from dermoid cysts. Taiwan J Obstet Gynecol. 2015 Oct; 54 (5): 559–66. doi:10.1016/j.tjog.2015.08.008.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/451Test

الإتاحة: https://doi.org/10.21294/1814-4861-2016-15-6-79-8810.21294/1814-4861-2016-15-610.1016/S0301Test–2115(99)00141–410.17925/EOH.2013.09.1.1710.1111/j.1471–0528.2007.01478.x10.1111/IGC.0b013e3181c7fccf10.4103/0976–7800.14516910.1186/1757–2215–4–510.1097/PGP.0b013e3181c6d96510.1016/S1470–2045-(08)70306–110.1053/ejso.1999.072010.3816/CCC.2001.n.00610.1186/1752–1947–4–39210.1002/path.171133010410.1097/DCR.0b013e318242095310.1016/j.oraloncology.2010.01.01310.1016/0090–8258(87)90256–310.1016/j.tjog.2015.08.008
https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/451Test

المؤلفون: N. V. Vyatkina, I. G. Frolova, L. A. Kolomiets, S. V. Molchanov, A. B. Villert, Н. В. Вяткина, И. Г. Фролова, Л. А. Коломиец, С. В. Молчанов, А. Б. Виллерт

المصدر: Siberian journal of oncology; Том 15, № 4 (2016); 26-32 ; Сибирский онкологический журнал; Том 15, № 4 (2016); 26-32 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2016-15-4

مصطلحات موضوعية: дооперационное стадирование, disseminated ovarian cancer, preoperative staging, диссеминированный рак яичников

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/381/357Test; Аксель Е.М. Статистика злокачественных новообразований женской половой сферы. Онкогинекология. 2012; 1: 18–23.; Антонеева И.И., Генинг Т.П., Абакумова Т.В., Арсланова Д.Р., Генинг С.О. Алгоритм диагностики прогрессирующих форм рака яичников. Медицинский альманах. 2012; 4: 29–31.; Жорданиа К.И., Хохлова С.В. Ранний рак яичников. Наш взгляд на проблему. Онкогинекология. 2012; 1: 51–58.; Новикова Е.Г. Новые возможности лечения сарком и рака яичников. www Medlinks.ru. Раздел онкология и гематология. 2011.; Jemal A., Siegel R., Xu J., Ward E. Cancer statistic, 2010. CA Cancer J. Clin. 2010; 60 (5): 277–300. doi:10.3322/caac.20073.; Ашрафян Л.А., Антонова И.Б., Ивашина С.В., Люстик А.В., Ульянова А.В., Вашакмадзе С.Л. Ранняя диагностика рака эндометрия и яичников. Практическая онкология. 2009; Т. 10, № 2: 71–75.; Синицина М.Е., Чекалова М.А., Брюзгин В.В., Махова Е.Е. Место эхографии в уточнении подходов к лечению рака яичников. Опухоли женской репродуктивной системы. 2008; 4: 72–76.; Takur A., Mishra V., Jain S.K. Feed Forward Artificial Neural Network: Tool for Early Detection of Ovarian Cancer. Sci Pharm. 2011; 79 (3): 493–505. doi:10.3797/scipharm.1105-11.; Виллерт А.Б., Коломиец Л.А., Родичева Н.С., Иванова А.А., Чердынцева Н.В., Стуканов С.Л. Особенности рака яичников у больных с мутацией BRCA1 5382insC. Сибирский онкологический журнал. 2014; 6: 19–26.; Молчанов С.В., Коломиец Л.А. Диссеминированный рак яичников: современный подход к лекарственной терапии (обзор литературы). Сибирский онкологический журнал. 2015; 6: 68–75.; Молчанов С.В., Коломиец Л.А., Фролова И.Г., Вяткина Н.В., Бакланова Н.С. Перитонеальный канцероматоз при раке яичников: эхосемиотика, классификация. Вестник РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН. 2014. Т. 25, № 1–2: 14–21.; Прокопенко П.Г., Терентьев А.А. Опухоли яичников: некоторые особенности эволюции, распространения и диагностики. Вопросы онкологии. 2009; 55 (2): 143–150.; Чекалова М.А., Поддубная И.В., Мазырко М.А., Синицина М.Е. Место УЗТ при планировании лечения злокачественных эпителиальных опухолей яичников. Современная онкология. 2007; Т. 9, № 1: 66–70.; Востров А.Н., Степанов С.О., Корнеева И.А. История и современные тенденции применения ультразвукового исследования при раке яичников // Лучевая диагностика и терапия. 2013; 3 (4): 22–28.; Степанов С.О., Митина Л.А., Гуц О.В., Беспалов П.Д. Визуализация перитонеальной диссеминации при ультразвуковом исследовании. Лучевая диагностика и терапия. 2013; 3 (4): 66–70.; Болдогоева И.М., Берзин С.А. Современные возможности диагностики рака яичников в онкологическом диспансере / Под ред. С.М. Демидова. Екатеринбург; 2007: 34–52.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/381Test

الإتاحة: https://doi.org/10.21294/1814-4861-2016-15-4-26-3210.21294/1814-4861-2016-15-410.3322/caac.2007310.3797/scipharm.1105-11Test
https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/381Test

المؤلفون: N. V. Yunusova, I. V. Kondakova, L. A. Kolomiets, T. V. Tropina, A. B. Villert, O. V. Spilyeva, V. D. Koval, Н. В. Юнусова, И. В. Кондакова, Л. А. Коломиец, Т. В. Тропина, А. Б. Виллерт, Щ. В. Шпилева, В. Д. Коваль

المصدر: Siberian journal of oncology; № 3 (2013); 29-36 ; Сибирский онкологический журнал; № 3 (2013); 29-36 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; undefined

مصطلحات موضوعية: неоадъювантная химиотерапия, ovarian cancer, omentum metastasis, peritoneal metastasis, neoadjuvant chemotherapy, рак яичников, имплантационные метастазы

وصف الملف: application/pdf

العلاقة: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/127/129Test; Винокуров В.Л. Рак яичников: закономерности метастазирования:выбор адекватного лечения больных. CПб.: ООО «Издательство ФОЛИАНТ», 2004. 336 c.; Ровенский Ю.А., Васильев Ю.М. Морфогенетические реакции клеток и их нарушения при опухолевой трансформации // Канцерогенез / Под ред. Д.Г. Заридзе. М.: Медицина, 2004. С. 376–414.; Спирина Л.В., Кондакова И.В. Миграция клеток и онкогенез // Российский онкологический журнал. 2010. № 3. С. 49–53.; Юнусова Н.В., Кондакова И.В., Коломиец Л.А. и др.Экспрессия белков, ассоциированных с клеточной подвижностью,в злокачественных новообразованиях яичника // Сибирский онкологический журнал. 2012. № 1 (49). С. 54–62.; Bourguignon L.Y., Peyrollier K., Gilad E. et al. Hyaluronan-CD44 interaction with neural Wiskott-Aldrich syndrome protein (N-WASP) promotes actin polymerization and ErbB2 activation leading to beta-catenin nuclear translocation, transcriptional up-regulation, and cell migration in ovarian tumor cells // J. Biol.Chem. 2007. Vol. 282 (2). P. 1265–1280.; Chi D.S., Musa F., Dao F. et al. An analysis of patients with bulky advanced stage ovarian, tubal, and peritoneal carcinoma treated with primary debulking surgery (PDS) during an identical time period as the randomized EORTC-NCIC trial of PDS vs neoadjuvant chemotherapy (NACT) // Gynecol. Oncol. 2012. 124 (1). P. 10–14.; Chintamani C., Jha B.P., Bhandari V. et al. The expression of mismatched repair genes and their correlation with clinicopathological parameters and response to neo-adjuvant chemotherapy in breast cancer // Int. Semin. Surg. Oncol. 2007. Vol. 14. P. 4–5.; Kenny H.A., Krausz T., Yamada S.D., Lengyel E. Use of a novel 3D culture model to elucidate the role of mesothelial cells, fibroblasts and extra-cellular matrices on adhesion and invasion of ovarian cancer cells to the omentum // Int. J. Cancer. 2007. Vol. 121 (7). P. 1463–1472.; Levina E., Oren M., Ben-Ze’ev A. Downregulation of β-catenin by p53 involves changes in the rate of β-catenin phosphorylation and Axin dynamics // Oncogene. 2004. Vol. 23. P. 4444–4453.; Litwin M., Mazur A.J., Nowak D. et al. Gelsolin in human colon adenocarcinoma cells with different metastatic potential // Acta Biochimica Polonica. 2009. Vol. 56 (4). P. 739–743.; Moon E.Y., Song J.H., Yang K.H. Actin-sequestering protein, thymosin-beta-4, inhibits caspase-3 activation in paclitaxel-induced tumor cell death // Oncol. Res. 2007. Vol. 16 (11). P. 507–516.; Otsubo T., Iwaya K., Mukai Y. et al. Involvement of Arp2/3 complex in the process of colorectal carcinogenesis // Mod. Pathol. 2004. Vol. 17 (4). P. 461–467.; Sodek K.L., Murphy K.J., Brown T.J., Ringuette M.J. Cell-cell and cell-matrix dynamics in intraperitoneal cancer metastasis // Cancer Metastasis Rev. 2012. Vol. 31 (1–2). P. 397–414.; Wenners A.S., Mehta K., Loibl S. et al. Neutrophil gelatinase-associated lipocalin (NGAL) predicts response to neoadjuvant chemotherapy and clinical outcome in primary human breast cancer // PLoS One. 2012. Vol. 7 (10). doi:10.1371/journal.pone.0045826:e45826. Электронный журнал. Режим доступа: www.plosone.org/article.; Yan X.D., Pan L.Y., Lang J.H. et al. Identification of platinumresistance associated proteins through proteimic analysis of human ovarian cancer cells and their platinum-resistant sublines // J. Proteome Res. 2007. Vol. 6 (2). P. 772–780.; Yildirim Y., Ertas I.E., Dogan A. et al. The predictors of response to neoadjuvant chemotherapy in advanced epithelial ovarian cancer // J. Surg. Oncol. 2012. Vol. 105 (2). P. 200–205.; Zheng H.C., Zheng Y.S., Li X.H. et al. Arp2/3 overexpression contributed to pathogenesis, growth and invasion of gastric carcinoma // Anticancer Res. 2008. Vol. 28 (4B). P. 2225–2232.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/127Test; undefined

الإتاحة: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0045826:e45826Test
https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/127Test